Химическая и микробиологическая характеристика почв, образовавшихся при самозарастании отходов обогащения редкометалльных руд в Субарктике

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Разработка месторождения редкометалльных руд в Мурманской области в течение последних 70 лет сопровождалась складированием мелкозернистых отходов обогащения, что привело к образованию двух полей хвостохранилищ. На поле, выведенном из эксплуатации 35 лет назад, происходят процессы естественного зарастания. Проведены исследования минерального и химического состава, количественных и качественных характеристик микробиоты техногенных поверхностных образований (ТПО) и почв, сформировавшихся на отходах обогащения лопаритовых руд. С увеличением возраста ТПО наблюдалось разрушение слабоустойчивых щелочных минералов одновременно с увеличением содержания углерода от 0 до 4.5% в верхнем горизонте почвы. Дифференциальным термическим анализом установлено, что органическое вещество грубогумусового горизонта условно-фоновой почвы имело более сложный состав по сравнению с органическим веществом, образовавшимся на материале хвостохранилища редкометалльных руд. Отмечен рост численности и биомассы бактерий и микроскопических грибов, видового разнообразия микромицетов и выравнивание функционального профиля микроорганизмов при переходе от исходного материала хвостохранилища к участкам с растительностью. Полученные результаты могут лечь в основу природно-ориентированной технологии инициализации почвообразовательного процесса с применением аборигенных штаммов микроорганизмов, устойчивых к условиям редкометалльных хвостохранилищ.

Об авторах

Е. А. Красавцева

Федеральный исследовательский центр “Кольский научный центр Российской академии наук”

Автор, ответственный за переписку.
Email: e.krasavtseva@ksc.ru

Центр наноматериаловедения, Институт проблем промышленной экологии Севера

Россия, ул. Ферсмана, 14, Апатиты, 184209

А. С. Сошина

Федеральный исследовательский центр “Кольский научный центр Российской академии наук”; Российский университет дружбы народов

Email: e.krasavtseva@ksc.ru

Институт проблем промышленной экологии Севера

Россия, мкр. Академгородок, 14а, Апатиты, 184209; ул. Миклухо-Маклая, 6, Москва, 117198

Т. К. Иванова

Федеральный исследовательский центр “Кольский научный центр Российской академии наук”

Email: e.krasavtseva@ksc.ru

Центр наноматериаловедения, Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырья им. И.В. Тананаева

Россия, ул. Ферсмана, 14, Апатиты, 184209

И. А. Мосендз

Федеральный исследовательский центр “Кольский научный центр Российской академии наук”

Email: e.krasavtseva@ksc.ru

Центр наноматериаловедения, Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырья им. И.В. Тананаева

Россия, ул. Ферсмана, 14, Апатиты, 184209

В. В. Максимова

Федеральный исследовательский центр “Кольский научный центр Российской академии наук”

Email: e.krasavtseva@ksc.ru

Центр наноматериаловедения, Институт проблем промышленной экологии Севера

Россия, ул. Ферсмана, 14, Апатиты, 184209

М. В. Корнейкова

Федеральный исследовательский центр “Кольский научный центр Российской академии наук”; Российский университет дружбы народов

Email: e.krasavtseva@ksc.ru

Институт проблем промышленной экологии Севера

Россия, мкр. Академгородок, 14а, Апатиты, 184209; ул. Миклухо-Маклая, 6, Москва, 117198

Н. В. Фокина

Федеральный исследовательский центр “Кольский научный центр Российской академии наук”

Email: e.krasavtseva@ksc.ru

Институт проблем промышленной экологии Севера

Россия, мкр. Академгородок, 14а, Апатиты, 184209

А. А. Чапоргина

Федеральный исследовательский центр “Кольский научный центр Российской академии наук”

Email: e.krasavtseva@ksc.ru

Институт проблем промышленной экологии Севера

Россия, мкр. Академгородок, 14а, Апатиты, 184209

Е. С. Латюк

Федеральный исследовательский центр “Кольский научный центр Российской академии наук”

Email: e.krasavtseva@ksc.ru

Институт проблем промышленной экологии Севера

Россия, мкр. Академгородок, 14а, Апатиты, 184209

И. Р. Елизарова

Федеральный исследовательский центр “Кольский научный центр Российской академии наук”

Email: e.krasavtseva@ksc.ru

Институт проблем промышленной экологии Севера

Россия, мкр. Академгородок, 14а, Апатиты, 184209

А. А. Широкая

Федеральный исследовательский центр “Кольский научный центр Российской академии наук”

Email: e.krasavtseva@ksc.ru

Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырья им. И.В. Тананаева

Россия, мкр. Академгородок, 26а, Апатиты, 184209

А. В. Долгих

Институт географии Российской академии наук

Email: e.krasavtseva@ksc.ru
Россия, Старомонетный пер., 29, стр. 4, Москва, 119017

М. В. Слуковская

Федеральный исследовательский центр “Кольский научный центр Российской академии наук”; Российский университет дружбы народов

Email: e.krasavtseva@ksc.ru

Центр наноматериаловедения, Институт химии и технологии редких элементов и минерального сырья им. И.В. Тананаева

Россия, ул. Ферсмана, 14, Апатиты, 184209; ул. Миклухо-Маклая, 6, Москва, 117198

Список литературы

  1. Абакумов Е.В. Первичные почвы в природных и антропогенных экосистемах. Автореф. дис. ... докт. биол. наук. Тольятти, 2012. 41 с.
  2. Андроханов В.А. Почвенно-экологическое состояние техногенных ландшафтов: динамика и оценка. Автореф. дис. ... д-р. биол. наук. Новосибирск, 2005. 36 с.
  3. Артамонова В.С. Микробиологические особенности антропогенно трансформированных почв Западной Сибири. Новосибирск: Изд-во СО РАН, 2002. 225 с.
  4. Горбачева Т.Т., Лусис А.В., Иванова Л.А. Химическая мелиорация нефелиновых песков c применением осадка сточных вод регионального предприятия водопроводно-канализационного хозяйства // Вестник МГТУ. 2021. № 24. С. 88–96. https://doi.org/10.21443/1560-9278-2021-24-1-88-96
  5. Горячев А.А., Красавцева Е.А., Лащук В.В., Икконен П.В., Смирнов А.А., Максимова В.В., Макаров Д.В. Оценка экологической опасности и возможности переработки хвостов обогащения лопаритовых руд // Экология и промышленность России. 2020. № 24. С. 46–51. https://doi.org/10.18412/1816-0395–2020-12-46-51
  6. Горячкин С.В., Мергелов Н.С., Таргульян В.О. Генезис и география почв экстремальных условий: элементы теории и методические подходы // Почвоведение. 2019. № 1. С. 5–19. https://doi.org/10.1134/S0032180X19010040
  7. Грум-Гржимайло О.А., Биланенко Е.Н. Комплексы микромицетов верховых болот побережья Кандалакшского залива Белого моря //Микология и фитопатология. 2012. Т. 46. № 5. С. 297–305.
  8. Дабах Е.В. Редкоземельные элементы в почвах и растениях луговых биоценозов // Теоретическая и прикладная экология. 2021. № 4. С. 104–111. https://doi.org/10.25750/1995–4301-2021-4-104-111
  9. Добровольская Т.Г., Бызов Б.А., Гузев В.С., Кожевин П.А., Лысак Л.В., Полянская Л.М., Зенова Г.М., Марфенина О.Е., Степанов А.Л., Умаров М.М., Кураков А.В. Методы почвенной микробиологии и биохимии. М.: Изд-во МГУ, 1991. 304 с.
  10. Добровольская Т.Г., Звягинцев Д.Г., Чернов И.Ю., Головченко А.В., Зенова Г.М., Лысак Л.В., Манучарова Н.А., Марфенина О.Е., Полянская Л.М., Степанов А.Л., Умаров М.М. Роль микроорганизмов в экологических функциях почв // Почвоведение. 2015. № 9. С. 1087–1087. https://doi.org/10.7868/S0032180X15090038
  11. Евдокимова Г.А., Мозгова Н.П. Сравнительная характеристика микробной биомассы AI-FE-гумусовых подзолов Кольского полуострова // Почвоведение. 2001. № 12. С. 1465–1472.
  12. Евдокимова Г.А., Корнейкова М.В., Лебедева Е.В. Сообщества микромицетов в почвах в зоне воздействия алюминиевого завода // Микология и фитопатология. 2007. Т. 41. № 1. С. 20–28.
  13. Евдокимова Г.А., Корнейкова М.В., Лебедева Е.В., Калмыкова В.В. Микромицеты в песках и песчаных почвах природного и техногенного генезиса // Микология и фитопатология. 2009. Т. 43. № 2. С. 84–92.
  14. Евдокимова Г.А., Переверзев В.Н., Зенкова И.В., Корнейкова М.В., Редькина В.В. Эволюция техногенных ландшафтов (на примере отходов апатитовой промышленности). Апатиты: Изд-во Кольского научного центра, 2010. 146 с.
  15. Звягинцев А.Г., Бабьева И.П., Зенова Г.М. Биология почвы. М.: Изд-во Моск. ун-та, 2005. 445 с.
  16. Калмыкова В.В. Биологическая активность кузоменских песков Мурманской области // Глубокая переработка минеральных ресурсов. Апатиты: КНЦ РАН, 2008. С. 172–175.
  17. Классификация и диагностика почв России. Смоленск: Ойкумена, 2004. http://infosoil.ru (дата обращения 15.04.2024).
  18. Копцик Г.Н. Современные подходы к ремедиации почв, загрязненных тяжелыми металлами (обзор литературы) // Почвоведение. 2014. № 7. С. 851. https://doi.org/10.7868/S0032180X14070077
  19. Корнейкова М.В. Сравнительный анализ численности и структуры комплексов микроскопических грибов в почвах тундры и тайги Кольского Севера // Почвоведение. 2018. № 1. С. 86–92. https://doi.org/10.7868/S0032180X18010094
  20. Корнейкова М.В., Никитин Д.А. Качественные и количественные характеристики почвенного микробиома в зоне воздействия выбросов Кандалакшского алюминиевого завода // Почвоведение. 2021. № 6. С. 725–734. https://doi.org/10.31857/S0032180X21060083
  21. Красавина Т.Н., Розинова Е.Л., Касатов Б.К., Иванова В.П. Термический анализ минералов и горных пород / Под ред. Ивановой В.П. Л.: Недра, 1974. 339 с.
  22. Ладонин Д.В. Формы соединений тяжелых металлов в техногенно загрязненных почвах. Автореф. дис. ... докт. биол. наук. М., 2016. 42 с.
  23. Лебедева М.П., Кутовая О.В., Сиземская М.Л., Хохлов С.Ф. Микроморфологическая и микробиологическая диагностика первичного почвообразования на днище искусственного понижения в условиях полупустыни Северного Прикаспия // Почвоведение. 2014. № 11. С. 1332. https://doi.org/10.7868/S0032180X14110069
  24. Махонина Г.И. Состав гумуса почв, образующихся на буроугольных отвалах при естественном зарастании // Проблемы рекультивации земель в СССР. Новосибирск: Наука, 1974. С. 205–209.
  25. Павлова Л.М., Куимова Н.Г., Римкевич О.В. Биотехнологический потенциал фосфатмобилизующих бактерий в процессах рекультивации посттехногенных ландшафтов // Вестник ДВО РАН. 2008. № 3. С. 44–50.
  26. Павлова Л.М., Шумилова Л.П. Микробно-растительные сообщества в техногенных грунтах россыпной золотодобычи // Международный журнал гуманитарных и естественных наук. 2021. № 12. С. 7–13. https://doi.org/10.24412/2500-1000-2021-12-3-7-13
  27. Павлович Н.В., Кокин А.В., Силаев В.И., Аронова Н.В., Цимбалистова М.В., Киселева Д.В., Слюсарь А.В. Сравнительный анализ состава микроэлементов у бактерий различных видов // Актуальные вопросы изучения особо опасных и природно-очаговых болезней: Сб. ст. науч.-пр. конф. Ростов-на-Дону, 25–26 сентября 2019 года. Новосибирск, 2019. С. 309–313.
  28. Переверзев В.Н. Генетические особенности почв природных поясов хибинских гор (Кольский полуостров) // Почвоведение. 2010. № 5. С. 548–557.
  29. Переверзев В.Н., Ивлиев А.И., Горбунов А.В., Ляпунов С.М. Первичное почвообразование на отвалах обогащения апатито-нефелиновых руд Кольского полуострова // Почвоведение. 2007. № 8. С. 1006–1013.
  30. Переломов Л.В., Асаинова Ж.С., Йошида С., Иванов И.В. Содержание редкоземельных элементов в почвах Приокско-террасного биосферного заповедника // Почвоведение. 2012. № 10. С. 1115.
  31. Приймак Т.И., Зосин А.П., Федоренко Ю.В., Кошкина Л.Б., Калабин Г.В. Экологические аспекты процессов геохимической трансформации хвостов обогащения апатито-нефелиновых руд Хибинского месторождения. Апатиты: КНЦ РАН, 1998. 51 с.
  32. Рой А.А., Рева О.Н., Курдиш И.К., Смирнов В.В. Биологические свойства фосфатмобилизующего штамма Bacillus subtilis ИМВ В-7023 // Прикладная биохимия и микробиология. 2004. № 40. С. 551–557.
  33. Сиромля Т.И. К вопросу о подвижных формах соединений химических элементов в почвах // Сибирский экологический журнал. 2009. № 16. С. 307–318.
  34. Сумина О.И., Власов Д.Ю., Долгова Л.Л., Сафронова Е.В. Особенности формирования сообществ микромицетов в зарастающих песчаных карьерах севера Западной Сибири // Вестник СПб. ун-та. Сер. 3. Биология. 2010. № 2. С. 84–90.
  35. Allingham S.M., Nwaishi F.C., Andersen R., Lamit L.J., Elliott D.R. Microbial communities and biogeochemical functioning across peatlands in the Athabasca Oil Sands region of Canada: Implications for reclamation and management // Land Degradation Development. 2023. V. 34. P. 1504–1521. https://doi.org/10.1002/ldr.4549
  36. Baffi C., Dell’Abate M. T., Nassisi A., Silva S., Benedetti A., Genevini P. L., Adani F. Determination of biological stability in compost: A comparison of methodologies // Soil Biol. Biochem. 2007. V. 39. P. 1284–1293. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2006.12.004
  37. Bogorodskaya A.V., Krasnoshchekova E.N., Trefilova O.V., Shishikin A.S. Seasonal dynamics of the development of microbiocenoses and invertebrate complexes on overburden dumps of the Borodino brown coal mine (KATEK) // Geography and Natural Resources. 2010. V. 4. P. 36–45. https://doi.org/10.1016/j.gnr.2010.11.005
  38. Bubnova E.N. Diversity of the microscopic fungi in the littoral sands of the White Sea // Moscow University Biological Sciences Bulletin. 2017. V. 72. P. 121–127.
  39. Campbell C.D., Chapman S.J., Cameron C.M., Davidson M.S., Potts J.M. A rapid microtiter plate method to measure carbon dioxide evolved from carbon substrate amendments so as to determine the physiological profiles of soil microbial communities by using whole soil // Appl. Environ. Microbiol. 2003. V. 69. P. 3593–3599. https://doi.org/10. 1128/AEM.69.6.3593
  40. Clarholm M., Skyllberg U., Rosling A. Organic acid induced release of nutrients from metal-stabilized soil organic matter–the unbutton model // Soil Biol. Biochem. 2015. V. 84. P. 168–176. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2015.02.019
  41. Cong Y., Yu R.L., Yan Y., Weng B.S., Hu G.R., Sun J.W., Cui J.-Y., YanYan, Huang Y.Y. Source analysis of metals in the tea plant using linear correlation analysis combined with a lead-strontium isotope tracer // Catena. 2023. V. 229. P. 107194. https://doi.org/10.1016/j.catena.2023.107194
  42. Costa O.Y., Oguejiofor C., Zühlke D., Barreto C.C., Wünsche C., Riedel K., Kuramae E.E. Impact of different trace elements on the growth and proteome of two strains of Granulicella, class “Acidobacteriia” // Front. Microbiol. 2020. V. 11. P. 1227. https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.01227
  43. Domsch K.H., Gams W., Anderson T.H. Compendium of soil fungi. Heidelberg: IHW–Verlag, 2007. 672 p.
  44. Fedotov P.S., Rogova O.B., Dzhenloda R.Kh., Karandashev V.K. Metal-organic complexes as a major sink for rare earth elements in soils // Environ. Chem. 2019. V. 16. № 5. P. 323–332. https://doi.org/10.1071/EN18275
  45. Forghani G., Mokhtari A.R., Kazemi G.A., Fard M.D. Total concentration, speciation and mobility of potentially toxic elements in soils around a mining area in central Iran // Geochemistry. 2015. V. 75. P. 323–334. https://doi.org/10.1016/j.chemer.2015.05.001
  46. Glotov V.E., Chlachula J., Glotova L.P., Little E. Causes and environmental impact of the gold-tailings dam failure at Karamken, the Russian Far East // Engineering Geology. 2018. V. 245. P. 236–247. https://doi.org/10.1016/j.enggeo.2018.08.012
  47. Gómez-Brandón M., Herbón C., Probst M., Fornasier F., Barral M.T., Paradelo R. Influence of land use on the microbiological properties of urban soils // Appl. Soil Ecology. 2022. V. 175. P. 104452. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2022.104452
  48. Huang X., Deng H., Zheng C., Cao G. Hydrogeochemical signatures and evolution of groundwater impacted by the Bayan Obo tailing pond in northwest China // Sci. Total Environ. 2016. V. 543. P. 357–372. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2015.10.150
  49. Index Fungorum. http://www.indexfungorum.org (дата обращения 15.04.2024)
  50. IUSS Working Group WRB. World Reference Base for Soil Resources. International soil classification system for naming soils and creating legends for soil maps. Vienna: International Union of Soil Sciences (IUSS), 2022.
  51. Ivashchenko K., Lepore E., Vasenev V., Ananyeva N., Demina S., Khabibullina F., Vaseneva I., Selezneva A., Dolgikh A., Sushko S., Marinari S., Dovletyarova E. Assessing soil-like materials for ecosystem services provided by constructed Technosols // Land. 2021. V. 10. P. 1185. https://doi.org/10.3390/land10111185
  52. Ivashchenko K., Sushko S., Selezneva A., Ananyeva N., Zhuravleva A., Kudeyarov V., Makarov M., Blagodatsky S. Soil microbial activity along an altitudinal gradient: vegetation as a main driver beyond topographic and edaphic factors // Appl. Soil Ecol. 2021. V. 1685. P. 104197. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2021.104197
  53. Kasatkina E.A., Shumilov O.I., Kirtsideli I.Yu., Makarov D.V. Bioleaching potential of microfungi isolated from Arctic loparite ore tailings (Kola Peninsula, Northwestern Russia) // Geomicrobiol. J. 2023. V. 40. P. 285–294. https://doi.org/10.1080/01490451.2022.2162166
  54. Kavamura V.N., Esposito E. Biotechnological strategies applied to the decontamination of soils polluted with heavy metals // Biotechnol. Adv. 2010. V. 28. P. 61–69. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2009.09.002
  55. Klich M.A. Identification of Common Aspergillus Species. Utrecht, The Netherlands: CBS Fungal Biodiversity Centre, 2002.
  56. Kooistra M.J., Pulleman M.M. Features Related to Faunal Activity // Interpretation of Micromorphological Features of Soils and Regoliths. Elsevier, 2018. P. 447–469. https://doi.org/10.1016/B978-0-444-63522-8.00016-4
  57. Kossoff D., Dubbin W.E., Alfredsson M., Edwards S.J., Macklin M.G., Hudson-Edwards K.A. Mine tailings dams: Characteristics, failure, environmental impacts, and remediation // Appl. Geochem. 2014. V. 51. P. 229–245. https://doi.org/10.1016/j.apgeochem.2014.09.010
  58. Krasavtseva E.A., Ivanova T.K., Maksimova V.V., Mosendz I.A., Kanareykina I.P., Panikorovskii T.L., Shirokaya A.A., Slukovskaya M.V. Improvement of the hydrophysical properties of substrates of technogenic landscapes using expanded vermiculite // IOP Conf. Ser.: Earth Environ. Sci. 2021. V. 848. P. 12144. https://doi.org/10.1088/1755-1315/848/1/012144
  59. Krasavtseva E.A., Maksimova V.V., Elizarova E.I., Malysheva M.B. Assessment of Soil Pollution by Rare Earth Elements in the Area Affected by the Rare Metal Plant in Russia // Euras. Soil Sci. 2023. V. 56. № S2. P. S194–S201. https://doi.org/10.1134/s1064229323601403
  60. Krasavtseva E., Maksimova V., Makarov D., Potorochin E. Modelling of the chemical halo of dust pollution migration in loparite ore tailings storage facilities // Minerals. 2021. V. 11. P. 10. https://doi.org/10.3390/min11101077
  61. Krasavtseva E.A., Maksimova V.V., Makarov D.V., Selivanova E.A., Ikkonen P.V. Studies of Properties and Composition of Loparite Ore Mill Tailings // J. Mining Sci. 2021. V. 57. P. 531–538. https://doi.org/10.1134/S1062739121030182
  62. Kumar S., Abedin M.M., Singh A.K., Das S. Role of Phenolic Compounds in Plant-Defensive Mechanisms. // Plant Phenolics in Sustainable Agriculture. Springer, 2020. https://doi.org/10.1007/978-981-15-4890-1_22
  63. Lagomarsino A., Knapp B.A., Moscatelli M.C., de Angelis P., Grego S., Insam H. Structural and functional diversity of soil microbes is affected by elevated [CO2] and N addition in a poplar plantation // J. Soils Sediments. 2007. V. 7 P. 399–405. https://doi.org/10.1065/jss2007.04.223
  64. Liu J., Du C., Beaman H.T., Monroe M.B.B. Characterization of phenolic acid antimicrobial and antioxidant structure–property relationships // Pharmaceutics. 2020. V. 12. P. 419. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics12050419
  65. Marinari S., Bonifacio E., Moscatelli M. C., Falsone G., Antisari L. V., Vianello G. Soil development and microbial functional diversity: Proposal for a methodological approach // Geoderma. 2013. V. 192. P. 437–445. https://doi.org/10.1016/j.geoderma.2012.08.023
  66. Minkina T.M., Mandzhieva S.S., Burachevskaya M.V., Bauer T. V. Sushkova S. N. Method of determining loosely bound compounds of heavy metals in the soil // Methods X. 2018. V. 5. P. 217–226. https://doi.org/10.1016/j.mex.2018.02.007
  67. Moscatelli M.C., Secondi L., Marabottini R., Papp R., Stazi S.R., Mania E., Marinari S. Assessment of soil microbial functional diversity: land use and soil properties affect CLPP-MicroResp and enzymes responses // Pedobiologia. 2018. V. 66. P. 36–42. https://doi.org/10.1016/j.pedobi.2018.01.001
  68. Nosanchuk J.D., Stark R.E., Casadevall A. Fungal melanin: what do we know about structure? // Front. Microbiol. 2015. V. 6. P. 1463. https://doi.org/10.3389/fmicb.2015.01463
  69. Panikorovskii T.L., Mikhailova J.A., Pakhomovsky Y.A., Bazai A.V., Aksenov S.M., Kalashnikov A.O., Krivovichev S.V. Zr-Rich Eudialyte from the Lovozero peralkaline massif, Kola Peninsula, Russia // Minerals. 2021. V. 11. P. 982. https://doi.org/10.3390/min11090982
  70. Plante A.F., Fernández J.M., Leifeld J. Application of thermal analysis techniques in soil science lication of thermal analysis techniques in soil science // Geoderma. 2009. V. 153. P. 1–10. https://doi.org/10.1016/j.geoderma.2009.08.016
  71. R Core Team. R: A Language and Environment for Statistical Computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna. https://www.R-project.org/ (дата обращения 15.04.2024)
  72. Redkina V.V., Korneykova M.V., Shalygina R.R. Microorganisms of the technogenic landscapes: The Case of nepheline-containing sands, the Murmansk Region // Processes and phenomena on the boundary between biogenic and abiogenic nature. Springer, 2020. P. 561–579.
  73. Rokade K., Mali G. Biodegradation of chlorpyrifos by Pseudomonas desmolyticum NCIM 2112 // Int. J. Pharma Bio Sci. 2013. V. 4. P. B609–B616.
  74. Salminen R. et al. Geochemical Atlas of Europe. Part 1. Background Information, Methodology and Maps. Espoo: Geological Survey of Finland, 2005. 526 p.
  75. Seifert K., Morgan-Jones G., Gams W., Kendrick B. The Genera of Hyphomycetes; Biodiversity Series. CBS, Reus: Utrecht, The Netherlands, 2011. № 9. P. 1–997.
  76. Sessitsch A., Kuffner M., Kidd P., Vangronsveld J., Wenzel W. W., Fallmann K., Puschenreiter M. The role of plant-associated bacteria in the mobilization and phytoextraction of trace elements in contaminated soils // Soil Biol. Biochem. 2013. V. 60. P. 182–194. https://doi.org/10.1016/j.soilbio.2013.01.012
  77. Shamshiripour M., Motesharezadeh B., Rahmani H. A., Alikhani H. A., Etesami H. Optimal concentrations of silicon enhance the growth of soybean (Glycine Max L.) cultivars by improving nodulation, root system architecture, and soil biological properties // Silicon. 2022. V. 14(10). P. 5333–5345. https://doi.org/10.1007/s12633-021-01273-3
  78. Shannon C., Weaver W. The mathematical theory of communication. Champaign-Urbana. US: The University of Illinois Press, 1964. 131 p.
  79. Šimonovičová A., Kraková L., Pauditšová E., Pangallo D. Occurrence and diversity of cultivable autochthonous microscopic fungi in substrates of old environmental loads from mining activities in Slovakia // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2019. V. 172. P. 194–202. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2019.01.064
  80. Terekhova V.A., Ivanova A.E., Shitikov V.K., Kydralieva K.A. Assessment of the ecological risk of technogenic soil pollution on the basis of the statistical distribution of the occurrence of micromycete species // Russ. J. Ecology. 2017. V. 48. № 5. P. 417–424. https://doi.org/10.1134/S1067413617050125
  81. Wang B., Chu C., Wei H., Zhang L., Ahmad Z., Wu S., Xie B. Ameliorative effects of silicon fertilizer on soil bacterial community and pakchoi (Brassica chinensis L.) grown on soil contaminated with multiple heavy metals // Environ. Pollut. 2020. V. 267. P. 115411. https://doi.org/10.1016/j.envpol.2020.115411
  82. Wang L., Ji B., Hu Y., Liu R., Sun W. A review on in situ phytoremediation of mine tailings // Chemosphere. 2017. V. 184. P. 594–600. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2017.06.025
  83. Wang P., Sun Z., Hu Y., Cheng H. Leaching of heavy metals from abandoned mine tailings brought by precipitation and the associated environmental impact // Sci. Total Environ. 2019. V. 695. P. 133893. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2019.133893
  84. Ward J.H. Hierarchical grouping to optimize an objective function // J. Am. Stat. Assoc. 1963. V. 58. P. 236–244. https://doi.org/10.1080/01621459.1963.10500845
  85. Wolfaardt G.M., Hendry M.J., Korber D.R. Microbial distribution and diversity in saturated, high pH, uranium mine tailings, Saskatchewan, Canada // Can. J. Microbiol. 2008. V. 54. № 11. P. 932–940. https://doi.org/10.1139/w08-084
  86. Wu Y.F., Wang Y.Z., Zhang X.Y. Mobilization of P by low molecular weight organic acids in a calcareous, neutral and acid soil with low available P status // Energy, Environmental & Sustainable Ecosystem Development. International Conference on Energy, Environmental & Sustainable Ecosystem Development (EESED 2015). Yunnan, 21–23 August 2015. P. 1–12. https://doi.org/10.1142/9789814723008_0118
  87. Xu L., Lofts S., Lu Y. Terrestrial ecosystem health under long‐term metal inputs: modeling and risk assessment // Ecosystem Health and Sustainability. 2016. V. 2. P. 11879026. https://doi.org/10.1002/ehs2.1214
  88. Zhang J., Li S., Sun X., Tong J., Fu Z., Li J. Sustainability of urban soil management: analysis of soil physicochemical properties and bacterial community structure under different green space types // Sustainability. 2019. V. 11. P. 1395. https://doi.org/10.3390/su11051395
  89. Zhu R.L., Wang D., Xu L., Shi R.-P., Wang J., Zheng M. Antibacterial activity in extracts of some bryophytes from China and Mongolia // J. Hattori Botanical Laboratory. 2006. V. 100. P. 603–615.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Приложение
Скачать (2MB)
Метаданные
3. Рис. 1. Карта-схема расположения и внешний вид участков отбора образцов: 1 – AI, 2 – AV, 3 – AO, 4 – AP.

Скачать (322KB)
Метаданные
4. Рис. 2. Кривые ДСК образцов: 1 – AV, 2 – AO (слой 5–10 см), 3 – AO (слой 0–5 см), 4 – AP.

Скачать (67KB)
Метаданные
5. Рис. 3. Фракционный состав микро- и макрокомпонентов в образцах: (а) – AI, (b) – AV, (c) – AO (слой 5–10 см), (d) – AО (слой 0–5 см), (e) – AP.

Скачать (403KB)
Метаданные
6. Рис. 4. Тепловая карта (а), отражающая величину дыхательного отклика (ДО) микробного сообщества на внесение различных органических субстратов и индекс функционального разнообразия Шеннона (b) в образцах почв: Glu, D – глюкоза; Fru, D – фруктоза; Gal, D – галактоза; Lc, L – лейцин; SR – сиреневая кислота; Gl – глицин; Arg, L – аргинин; Amb, α – аминомасляная кислота; LAS, L – аспарагиновая кислота; Asc – аскорбиновая кислота; Cit – лимонная кислота; Ox – щавелевая кислота; Vh – ванилиновая кислота. Буквы над столбцами означают наличие/отсутствие статистически значимых различий между образцами при p < 0.05.

Скачать (247KB)
Метаданные
7. Рис. 5. Компонентный анализ, показывающий взаимосвязь физико-химических и микробиологических параметров для обменной (а) и кислоторастворимой (b) фракций. КК – дыхательный отклик (ДО) микробного сообщества на внесение карбоновых кислот, УВ – ДО на внесение углеводов, АК – ДО на внесение аминокислот, ФК – ДО на внесение фенольных кислот, Нгрибы – индекс разнообразия Шеннона для грибных сообществ, Нclpp – индекс функционального разнообразия Шеннона.

Скачать (172KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2025