Perm Medical JournalPerm Medical JournalПермский медицинский журнал (сетевое издание "Perm medical journal")0136-14492687-1408Eco-Vector1294910.17816/pmj36328-37Methods of diagnostics and technologiesМетоды диагностики и технологииResearch ArticleMonocyte chemotactic factor content in normal sperm and in samples of ejaculate with diminished fertilityСодержание моноцитарного хемотаксического фактора в нормальной сперме и в образцах эякулята с пониженной фертильностью©https://orcid.org/0000-0002-1232-88264204-6796SosninDmitriy Yu.СоснинДмитрий Юрьевич
Russian Federation

Doctor of Medical Sciences, Professor of the Department of Clinical Laboratory Diagnostics

доктор медицинских наук, профессор кафедры клинической лабораторной диагностики ФДПО

sosnin_dm@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0001-9039-71173576-0522GalkovichKonstantin R.ГальковичКонстантин Романович
Russian Federation

Candidate of Medical Sciences, urologist

кандидат медицинских наук, врач-уролог

kr20211@yandex.ruE.A. Vagner Perm State Medical UniversityПермский государственный медицинский университет им. академика Е.А. ВагнераLtd Company “MedGarant”ООО «МедГарант»08082019363283729052019Copyright ©; 2019, Sosnin D.Y., Galkovich K.R.Copyright ©; 2019, Соснин Д.Ю., Галькович К.Р.2019Sosnin D.Y., Galkovich K.R.Соснин Д.Ю., Галькович К.Р.http://creativecommons.org/licenses/by-sa/4.0https://permmedjournal.ru/PMJ/article/view/12949

Aim. To study the dynamics of monocyte chemotactic factor (MCP-1) content in the ejaculate of healthy men and men with diminished spermatozoid concentration.

Material and methods.Sixty-four men were examined. The main group included 16 patients with azoospermia. The comparison group – 24 patients with oligozooasthenospermia (spermatozoid concentration lower than 15 mln/ml). The control group was presented by ejaculate samples of 24 healthy men, characterized by normal parameters. The MCP-1 concentration was determined with the method of solid phase enzyme immunoassay using the assay kit “MCP-1-EIA-BEST” (A8784) (CJSC Vector-Best, Russia).

Results. The mean MCP-1 concentration in the samples of undiluted seminal plasma was 2242.8 ± 672.0 pg/ml versus the blood serum, where MCP-1 content was 18.9 times lower and was 118.8 ± 22.9 pg/ml. No reliable differences were revealed when comparing the mean values of MCP-1 in the studied groups in ejaculates; there were also no statistically significant difference between the indices in MCP-1 groups in the blood serum.

Conclusions. Male seminal plasma is characterized by unusually high MCP-1 content, exceeding more than tenfold the concentration of this protein in the blood serum. High MCP-1 concentration in sperm and the absence of its dependence on the concentration of this protein in blood serum indicates local production of this protein into the seminal plasma by male reproductive organs. Further studies are needed to find out a concrete localization of the sites of production of this protein in male genital organs and to study its probable role in reproductive processes in male and female organisms.

Цель. Изучить динамику содержания моноцитарного хемотаксического фактора (MCP-1) в эякуляте здоровых мужчин и мужчин со снижением концентрации сперматозоидов.

Материалы и методы. Обследованы 64 мужчины. Основная группа – 16 пациентов с азооспермией. Группа сравнения – 24 пациента с олигозооастеноспермией (концентрация сперматозоидов ниже 15 млн/мл). Контрольная группа была представлена образцами эякулята 24 здоровых мужчин, характеризовавшихся нормальными параметрами. Концентрацию MCP-1 определяли методом твердофазного иммуноферментного анализа с использованием набора реактивов «MCP-1-ИФА-БЕСТ» (А 8784) (ЗАО «Вектор-Бест», Россия).

Результаты. Средняя концентрация MCP-1 в образцах неразведенной семенной плазмы составила 2242,8 ± 672,0 пг/мл, в сыворотке крови содержание MCP-1 было в 18,9 раза ниже и составило 118,8 ± ± 22,9 пг/мл. Не обнаружено достоверных различий при сравнении средних значений MCP-1 в эякуляте у обследованных из разных групп; отсутствует статистически значимая разница также между показателями в группах MCP-1 в сыворотке крови.

Выводы. Семенная плазма мужчин характеризуется необычно высоким содержанием MCP-1, превосходящим более чем в 10 раз концентрацию этого белка в сыворотке крови. Высокая концентрация MCP-1 в сперме и отсутствие ее зависимости от концентрации этого белка в сыворотке крови указывает на местную продукцию указанного протеина в семенную плазму органами репродуктивной системы мужчин. Необходимо проведение дальнейших исследований для выяснения конкретной локализации мест выработки данного белка в органах мужской половой системы и изучения его вероятной роли в процессах репродукции в мужском и женском организмах.

Monocyte chemotactic factormonocyte chemotactic protein-1MCP-1CC-chemokinemonocyte chemotactic and activating factorseminal plasmaspermmale infertilityejaculateinfertile marriageМоноцитарный хемотаксический фактормоноцитарный хемотаксический протеин-1MCP-1CC-хемокинмоноцитарный хемотаксический и активирующий факторсеменная плазмаспермамужское бесплодиеэякулятбесплодный бракАндрология. Мужское здоровье и дисфункция репродуктивной системы. Пер. с англ. под ред. Э. Нишлага, Г.М. Бере. М.: МИА 2005; 554.Галимов Ш.Н., Галимова Э.Ф., Павлов В.Н. Цитокиновый спектр сыворотки крови и спермоплазмы при идиопатическом бесплодии. Пермский медицинский журнал 2012; 29 (6): 58–63.Галькович К.Р., Кривцов А.В., Соснин Д.Ю. Интерлейкин-4 и прокальцитонин в эякуляте мужчин с нарушением фертильности. Лабораторная служба 2019; 8 (1): 20.Галькович К.Р., Соснин Д.Ю. Иммунохимическое определение концентрации иммуноглобулинов в эякуляте для диагностики хронических воспалительных заболеваний мужской репродуктивной системы. Клиническая лабораторная диагностика 2000; 1: 33–35.Колотов К.А., Распутин П.Г. Моноцитарный хемотаксический протеин-1 в физиологии и медицине. Пермский медицинский журнал 2018; 35(3): 99–105.Маякова В.Б. Местный иммунный ответ нейтрофилов цервикальной слизи женщин с воспалительными заболеваниями нижнего отдела урогенитального тракта при воздействии различными фракциями спермы здоровых мужчин. Пермский медицинский журнал 2014; 31(6): 45–51.Морозова И.И., Романова Л.А., Соснин Д.Ю. Общеклинические (химико-микроскопические) исследования. Клиническая лабораторная диагностика. Т. 1. Под ред. профессора В.В. Долгова. М.: Лабдиаг 2017; 204–295.Никифоров О.А., Ломейко Е.А., Ломако С.В., Лавыш И.А. Мужское бесплодие: актуальные вопросы физиологии, этиопатогенеза и диагностики нарушений репродуктивной системы у мужчин. Запорожский медицинский журнал 2014; 4 (85): 69–76.Носова Г.Г., Федорцева Ю.В., Морев В.В., Корнеев И.А. Изучение факторов риска развития бесплодия у мужчин, обратившихся в центр вспомогательных репродуктивных технологий. Урологические ведомости 2013; 3 (3): 121–125.Радченко О.Р., Балабанова Л.А. Методологические подходы к организации работы по профилактике бесплодия среди мужского населения на региональном уровне. Фундаментальные исследования 2011; 11–2: 354–357.Соснин Д.Ю., Ненашева О.Ю., Галькович К.Р. Использование анализатора эякулята для исследования спермограммы. Лаборатория 2018; 1: 52–53.Чалый М.Е., Ахвледиани Н.Д., Харчилава Р.Р. Мужское бесплодие. Урология 2017; 2 – S2: 4–19.Dosselli R., Grassl J., den Boer SPA, Kratz M., Moran J.M., Boomsma J.J., Baer B. Protein-level interactions as mediators of sexual conflict in mol cell proteomics 2019; 18 (suppl. 1): S34–S45.Gianella S., Smith D.M., Daar E.S., Dube M.P., Vanpouille C., Haubrich R.H., Morris S.R. Genital cytomegalovirus replication predicts syphilis acquisition among HIV-1 infected men who have sex with men. PLoS One 2015; 10(6): e0130410.Kasperczyk A., Dobrakowski M., Czuba Z.P., Kapka-Skrzypczak L., Kasperczyk S. Environmental exposure to zinc and copper influences sperm quality in fertile males. Ann Agric Environ Med 2016; 23 (1): 138–143.Ota K., Jaiswal M.K., Ramu S., Jeyendran R., Kwak-Kim J., Gilman-Sachs A., Beaman K.D. Expression of a2 vacuolar ATPase in spermatozoa is associated with semen quality and chemokine-cytokine profiles in infertile men. PLoS One 2013; 8 (7): e70470.Pilatz A., Hudemann C., Wolf J., Halefeld I., Paradowska-Dogan A., Schuppe H.C., Hossain H., Jiang Q., Schultheiss D., Renz H., Weidner W., Wagenlehner F., Linn T. Metabolic syndrome and the seminal cytokine network in morbidly obese males. Andrology 2017; 5 (1): 23–30.Pillay T., Sobia P., Oliver A. J., Narain K., Liebenberg L. G., Ngcapu S., Mhlongo M., Passmore J., Baxter C., Archary D. Semen IgM, IgG1, and IgG3 differentially associate with pro-inflamattory cytokines in HIV-infected men. Front Immunol 2019; 9: 3141.Rametse C.L., Adefuye A.O., Oliver A.J., Curru L., Gamieldien H., Burgers W.A., Levis D.A., Williamson A.L., Katz A.A., Passmore J. Inflammatory cytokine profiles of semen influence cytokine responses of cervicovaginal epithelial cells. Front Immunol 2018; 9: 2721.Saraswat M., Joenväärä S., Jain T., Tomar A.K., Sinha A., Singh S., Yadav S., Renkonen R. Human spermatozoa quantitative proteomic signature classifies normo- and asthenozoospermia. Mol Cell Proteomics 2016; 16 (1): 57–72.Sharkey D.J., Macpherson A.M., Tremellen K.P., Mottershead D.G., Gilchrist R.B., Robertson S.A. TGF-β mediates proinflammatory seminal fluid signaling in human cervical epithelial cell. J Immunol 2012; 189 (2): 1024–1035.Sharkey D.J., Macpherson A.M., Tremellen K.P., Robertson S.A. Seminal plasma differentially regulates inflammatory cytokine gene expression in human cervical and vaginal epithelial cells. Mol Hum Reprod 2007; 13 (7): 491–501.Shimoya K., Matsuzaki N., Ida N., Okada T., Taniguchi T., Sawai K., Itoh S., Ohashi K., Saji F., Tanizawa O. Detection of monocyte chemotactic and activating factor (MCAF) and interleukin (IL)-6 in human seminal plasma and effect of leukospermia on these cytokine levels. Am J Reprod Immunol 1995; 34 (5): 311–316.WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. 5th ed., available at: https://apps.who.int/iris/ bitstream/handle/10665/44261/9789241547789_eng.pdf?sequence = 1.