Феномен сбрасывания слоя гликокаликса у скребня Corynosoma strumosum (Rudolphi, 1802) (Acanthocephala: Polymorphidae) в паратенических хозяевах в природе и эксперименте

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Обнаружено и впервые электронно-микроскопически подтверждено явление обновления поверхности тегумента у скребня Corynosoma strumosum, паразитирующего в паратенических хозяевах разных видов. В условиях экспериментальной инвазии толстощека Hadropareia middendorffii (Schmidt, 1904) (Zoarcidae) на 3-и сутки эксперимента наблюдалось отделение гликокаликса от тегумента. У скребней из рыб, вскрытых на 14-е и последующие сутки эксперимента, а также в случаях инвазии естественным путем, тегумент был покрыт таким же толстым слоем гликокаликса сформированным, очевидно, заново. У двух коринозом, инвазировавших палтуса Hippoglossus stenolepis (Schmidt, 1904) (Pleuronectidae) естественным путем, обнаружено похожее явление, однако вместе с толстым слоем гликокаликса их тегумент утрачивал и наружную мембрану. У других скребней, инвазировавших этот вид палтуса, тегумент был покрыт тонким слоем гликокаликса. Предполагается, что описанные феномены являются морфологическим проявлением защиты паразита от иммунного ответа хозяина.

Об авторах

Е. М. Скоробрехова

Институт биологических проблем Севера ДВО РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: skorobrechova@mail.ru
Россия, 685000, Магадан

В. П. Никишин

Институт биологических проблем Севера ДВО РАН

Email: skorobrechova@mail.ru
Россия, 685000, Магадан

Список литературы

  1. Галактионов К.В., Добровольский А.А. Гермафродитное поколение трематод. Л.: Наука. 1987. 193 с.
  2. Ждярска З., Соболева Т. Ультраструктура партенит и личинок брахилаймоидей // Функциональная морфология личинок трематод и цестод. Алма-Ата: Наука. 1986. С. 83–96.
  3. Максименко А.В., Турашев А.Д. Функции и состояние эндотелиального гликокаликса в норме и патологии // Атеросклер. Дислипидемия. 2011а. № 1. С. 4–17.
  4. Максименко А.В., Турашев А.Д. Визуализация, состав и структура эндотелиального гликокаликса // Атеросклер. Дислипидемия. 2011б. № 1. С. 28–40.
  5. Никишин В.П. Морфофункциональное разнообразие гликокаликса у ленточных червей // Успехи соврем. биол. 2016. Т. 136. № 5. С. 506–526.
  6. Никишин В.П. Модификации гликокаликса скребней // Изв. РАН. Сер. биол. 2018. № 1. С. 42–54.
  7. Никишин В.П., Скоробрехова Е.М. Две стратегии взаимоотношений скребней с паратеническими хозяевами // Зоол. журн. 2018. Т. 97. № 9. С. 1100–1109.
  8. Никишин В.П., Скоробрехова Е.М. Скребень Corynosoma strumosum в паратенических хозяевах: Взаимоотношения на организменном уровне в природе и эксперименте. М.: Товарищество науч. изд. КМК. 2020. 306 с.
  9. Скоробрехова Е.М., Никишин В.П. Зависимость строения капсулы, окружающей скребня Corynosoma strumosum, от видовой принадлежности естественного паратенического хозяина // Изв. РАН. Сер. биол. 2013. № 6. С. 696–712.
  10. Скоробрехова Е.М., Никишин В.П. Морфологические особенности скребня Corynosoma strumosum (Polymorphidae) в паратенических хозяевах бельдюге Zoarces elongatus (Kner, 1868) (Zoarcidae) и палтусе Hippoglossus stenolepis (Schmidt, 1904) (Pleuronectidae) // Биол. моря. 2017. № 1. С. 39–46.
  11. Скоробрехова Е.М., Никишин В.П. Структура и формирование капсулы вокруг скребня Corynosoma strumosum (Rudolphi, 1802) Lühe, 1904 в естественном паратеническом хозяине – рыбе Hadropareia middendorffii Schmidt, 1904. 1. Структура капсулы из рыб, инвазированных естественным образом // Изв. РАН. Сер. биол. 2021а. № 1. С. 73–82.
  12. Скоробрехова Е.М., Никишин В.П. Структура и формирование капсулы вокруг скребня Corynosoma strumosum (Rudolphi, 1802) Lühe, 1904 в естественном паратеническом хозяине – рыбе Hadropareia middendorffii Schmidt, 1904. 2. Экспериментальное изучение процесса инкапсуляции (предварительные результаты) // Изв. РАН. Сер. биол. 2021б. № 5. С. 507–520.
  13. Уголев А.М. Эволюция пищеварения и принципы эволюции функций: Элементы современного функционализма. Л.: Наука. 1985. 544 с.
  14. Bennett H.S. Morphological aspects of extracellular polysaccharides // J. Histochem. Cytochem. 1963. V. 11. P. 14–23.
  15. Chiang C.-P., Caulfield J.P. Schistosoma mansoni: ultrastructural demonstration of a miracidial glycocalyx that cross-reacts with antibodies raised against the cercarial glyco-calyx // Exp. Parasitol. 1988. V. 67. № 1. P. 63–72.
  16. Hahn R.G., Patel V., Dull R.O. Human glycocalyx shedding: Systematic review and critical appraisa // Acta Anaesthesiol Scand. 2021. V. 65. P. 590–606.
  17. Hockley D.J., McLaren D.J. Schistosoma mansoni: changes in the outer membrane of the tegument during development from cercaria to adult worm // Int. J. Parasitol. 1973. V. 3. № 1. P. 13–25.
  18. Horak P., Kovar L., Kolarova L., Nebesarova J. Cercaria–schistosomulum surface transformation of Trichobilharzia szidati and its putative immunological impact // Parasitology. 1998. V. 116. P. 139–147.
  19. Ito S. The enteric surface coat on cat intestinal microvilli // J. of Cell Biol. 1965. V. 27. P. 475–491.
  20. Ito S. Form and function of the glycocalyx on free cell surface // Phil. Trans. R. Soc. Lond. 1974. B. 268. P. 55–66. https://doi.org/10.1098/rstb.1974.0015
  21. Lammas D.A., Duffus W.P.H. The shedding of the outer glycocalyx of juvenile Fasciola hepatica // Veterinary Pa-rasitol. 1983. V. 12. № 2. P. 165–178.
  22. Luft J.H. Fine structure of capillary and endocapillary layer was revealed by Ruthenium red // Fed. Proc. 1966. V. 25. № 6. P. 1773–1783.
  23. Lumsden R.D. Surface ultrastructure and cytochemistry of parasitic helminths // Exp. Parasitol. 1975. V. 37. № 2. P. 267–339.
  24. Pries A.R., Secomb T.W., Gaethgens P. The endothelial surface layer // Pflügers Arch. – Eur. J. Physiol. 2000. V. 440. № 5. P. 653–666.
  25. Puentes S.M., Silva R.P.Da, Sacks D.L. et al. Serum resistance of metacyclic stage Leishmania major promasti-gotes is due to release of C5b-9 // J. Immunol. 1990. V. 145. № 12. P. 4311–4316.
  26. Řimnáčová J., Mikeš L., Turjanicová L., Bulantová J. Changes in surface glycosylation and glycocalyx shedding in Trichobilharzia regenti (Schistosomatidae) during the transformation of cercaria to schistosomulum // PLoS One. 2017. V. 12. № 3. e0173217.
  27. Samuelson J.C., Caulfild J.P. Loss of covalently labeled glycoproteins and glycolipids from the schistosomula of Schistosoma mansoni // J. Cell Biol. 1982. V. 94. № 2. P. 363–369.
  28. Skorobrekhova E.M., Nikishin V.P. Structure of capsule surrounding acanthocephalans Corynosoma strumosum in paratenic hosts of three species // Parasitol. Res. 2011. V. 108. № 2. P. 467–475.
  29. Skorobrekhova E.M., Nikishin V.P. Encapsulation of the aca-nthocephalan, Corynosoma strumosum (Rudolphi, 1802) Lühe, 1904, in the intermediate host, Spinulogammarus ochotensis // J. Parasitol. 2019. V. 105. № 4. P. 567–570.
  30. Wang J., Widlansky M.E. Cytoskeleton, cytoskeletal inte-ractions, and vascular endothelial function // Cell Health Cytoskeleton. 2012. V. 4. P. 119–127.
  31. Weinbaum S., Tarbell J.M., Damiano E.R. The structure and function of the endothelial glycocalyx layer // Annu. Rev. Biomed. Eng. 2007. V. 9. P. 121–167.
  32. Zambrano-Vila S., Rosales-Borjas D., Carrero J.C. et al. How protozoan parasites evade the immune response // Trends in Parasitol. 2002. V. 18. № 6. P. 272–278.

Дополнительные файлы


© Е.М. Скоробрехова, В.П. Никишин, 2023