Лаборатория биоиспытаний и механизма действия биологически активных веществ: недавние достижения в исследованиях биологически активных соединений

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Основное научное направление лаборатории биоиспытаний и механизма действия биологически активных веществ Тихоокеанского института биоорганической химии им. Г.Б. Елякова ДВО РАН – изучение биологической активности природных и синтетических соединений. В обзоре кратко рассматриваются основные достижения лаборатории за последние пять лет.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Елена Леонидовна Чайкина

Тихоокеанский институт биоорганической химии им. Г.Б. Елякова ДВО РАН

Email: chaykin.dima@yandex.ru

научный сотрудник

Россия, Владивосток

Ирина Григорьевна Агафонова

Тихоокеанский институт биоорганической химии им. Г.Б. Елякова ДВО РАН

Email: agafonova@piboc.dvo.ru
ORCID iD: 0000-0002-5587-2610

кандидат биологических наук, старший научный сотрудник

Россия, Владивосток

Екатерина Александровна Юрченко

Тихоокеанский институт биоорганической химии им. Г.Б. Елякова ДВО РАН

Email: eyurch@piboc.dvo.ru
ORCID iD: 0000-0001-7737-0980

кандидат биологических наук, старший научный сотрудник

Россия, Владивосток

Екатерина Александровна Чингизова

Тихоокеанский институт биоорганической химии им. Г.Б. Елякова ДВО РАН

Email: martyyas@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0093-5757

кандидат биологических наук, старший научный сотрудник

Россия, Владивосток

Сергей Антонович Козловский

Тихоокеанский институт биоорганической химии им. Г.Б. Елякова ДВО РАН

Email: sergeimerx@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-9961-8350

младший научный сотрудник

Россия, Владивосток

Евгений Александрович Пислягин

Тихоокеанский институт биоорганической химии им. Г.Б. Елякова ДВО РАН

Email: pislyagin@hotmail.com
ORCID iD: 0000-0002-3558-0821

кандидат биологических наук, старший научный сотрудник

Россия, Владивосток

Анна Леонидовна Бурылова

Дальневосточный федеральный университет

Email: anaburylova1@gmail.com

студентка

Россия, Владивосток

Екатерина Сергеевна Менчинская

Тихоокеанский институт биоорганической химии им. Г.Б. Елякова ДВО РАН

Email: ekaterinamenchinskaya@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4027-9064

кандидат биологических наук, старший научный сотрудник

Россия, Владивосток

Дмитрий Львович Аминин

Тихоокеанский институт биоорганической химии им. Г.Б. Елякова ДВО РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: daminin@piboc.dvo.ru
ORCID iD: 0000-0002-1073-4994

член-корреспондент РАН, доктор биологических наук, заведующий лабораторией

Россия, Владивосток

Список литературы

  1. Клыков А. Г., Барсукова Е. Н., Чайкина Е. Л., Анисимов М. М. Перспективы и результаты селекции Fagopyrum esculentum Moench на повышение содержания флавоноидов // Вестн. ДВО РАН. 2019. № 3. С. 5–16.
  2. Барсукова Е. Н., Клыков А. Г., Чайкина Е. Л. Использование метода культуры ткани для создания новых форм Fagopyrum esculentum Moench // Рос.с.-х. наука. 2019. № 5. С. 3–6.
  3. Klykov A., Chaikina E., Anisimov M., Borovaya S., Barsukova E. Rutin content in buckwheat (Fagopyrum esculentum Moench, F. tataricum (L.) Gaertn. and F. cymosum Meissn.) growth in the Far East of Russia // Folia Biologica et Geologica. 2020. Vol 61 (1). P. 61–68. https://doi.org/10.3986/fbg0068.
  4. Барсукова Е. Н., Клыков А. Г., Фисенко П. В., Боровая С. А., Чайкина Е. Л. Использование методов биотехнологии в селекции гречихи на Дальнем Востоке // Вестн. ДВО РАН. 2020. №. 4 (212). С. 58–66.
  5. Borovaya S., Klykov A., Barsukova E., Chaikina E. Study of the effect of selective media with high doses of zinc on regeneration ability and rutin accumulation in common buckwheatin // Plants. 2022. Vol. 11 (3). P. 264. https://doi.org/10.3390/plants11030264.
  6. Барсукова Е. Н., Клыков А. Г., Чайкина Е. Л. Селекционная оценка сортообразцов гречихи посевной (Fagopyrum esculentum Moench), полученных с использованием ионов меди и цинка // Аграрная наука. 2023. Т. 374, № 9. С. 84–89. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2023-374-9-84-89.
  7. Агафонова И. Г., Котельников В. Н., Гельцер Б. И. Особенности структурно-функциональных изменений грудной аорты при экспериментальной артериальной гипертензии // Бюл. эксперим. биол. мед. 2022. Т. 174, № 9. С. 289–293. doi: 10.47056/0365-9615-2022-174-9-289-293.
  8. Агафонова И. Г., Котельников В. Н., Гельцер Б. И. Магнитно-резонансная томография головного мозга крыс в оценке нейропротективных эффектов гистохрома при экспериментальной артериальной гипертензии // Бюл. эксперим. биол. мед. 2021. Т. 172, № 9. C. 277–282. doi: 10.47056/0365-9615-2021-172-9-277-282.
  9. Применение гистохрома в качестве нейропротекторного средства, предотвращающего диффузионные изменения ткани головного мозга на ранней стадии развития артериальной гипертензии: пат. № 2021110258 РФ / Агафонова И. Г., Мищенко Н. П., Котельников В. Н., Гельцер Б. И.; заявл.12.04.2021; опубл. 07.02.2022.
  10. Agafonova I. G., Kotelnikov V. N., Geltser B. I., Kolosova N. G., Stonik V. A. Assessment of combined therapy of histochrome and nebivalol as angioprotectors on the background of experimental hypertension by magnetic resonance angiography // Appl. Magn. Resonance. 2018. Vol. 49 (2). P. 217–225. https://doi.org/10.1007/s00723-017-0960-3.
  11. Агафонова И. Г., Котельников В. Н., Гельцер Б. И. Оценка морфофункционального статуса головного мозга крыс Вистар на фоне артериальной гипертензии методом диффузионно-взвешенной томографии // Бюл. эксперим. биол. мед. 2021. Т. 171, № 2. С. 247–252. doi: 10.47056/0365-9615-2021-171-2-247-252.
  12. Chingizova E. A., Menchinskaya E. S., Chingizov A. R., Pislyagin E. A., Girich E. V., Yurchenko A. N., Guzhova I. V., Mikhailov V. V., Aminin D. L., Yurchenko E. A. Marine fungal cerebroside flavuside b protects HaCaT keratinocytes against Staphylococcus aureus induced damage // Mar. Drugs. 2021. Vol. 19 (10). P. 553. https://doi.org/10.3390/md19100553.
  13. Zhuravleva O. I., Chingizova E. A., Oleinikova G. K., Starnovskaya S. S., Antonov A. S., Kirichuk N. N., Menshov A. S., Popov R. S., Kim N. Y., Berdyshev D. V., Chingizov A. R., Kuzmich A. S., Guzhova I. V., Yurchenko A. N., Yurchenko E. A. Anthraquinone derivatives and other aromatic compounds from marine fungus Asteromyces cruciatus KMM 4696 and their effects against Staphylococcus aureus // Mar. Drugs. 2023. Vol. 21 (8). P. 431. https://doi.org/10.3390/md21080431.
  14. Yurchenko A. N., Zhuravleva O. I., Khmel O. O., Oleynikova G. K., Antonov A. S., Kirichuk N. N., Chausova V. E., Kalinovsky A. I., Berdyshev D. V., Kim N. Y., Popov R. S., Chingizova E. A., Chingizov A. R., Isaeva M. P., Yurchenko E. A. New cyclopiane diterpenes and polyketide derivatives from marine sediment-derived fungus Penicillium antarcticum KMM 4670 and their biological activities // Mar. Drugs. 2023. Vol. 21 (11). P. 584. https://doi.org/10.3390/md21110584.
  15. Zhuravleva O. I., Oleinikova G. K., Antonov A. S., Kirichuk N. N., Pelageev D. N., Rasin A. B., Menshov A. S., Popov R. S., Kim N. Y., Chingizova E. A., Chingizov A. R., Volchkova O. O., von Amsberg G., Dyshlovoy S. A., Yurchenko E. A., Guzhova I. V., Yurchenko A. N. New antibacterial chloro-containing polyketides from the alga-derived fungus Asteromyces cruciatus KMM 4696 // J. Fungi. 2022. Vol. 8 (5). P. 454. https://doi.org/10.3390/jof8050454.
  16. Girich E. V., Rasin A. B., Popov R. S., Yurchenko E. A., Chingizova E. A., Trinh P. T.H., Ngoc N. T.D., Pivkin M. V., Zhuravleva O. I., Yurchenko A. N. New tripeptide derivatives asperripeptides A-C from vietnamese mangrove-derived fungus Aspergillus terreus LM.5.2 // Mar. Drugs. 2022. Vol. 20 (1). P. 77. https://doi.org/10.3390/md20010077.
  17. Leshchenko E. V., Berdyshev D. V., Yurchenko E. A., Antonov A. S., Borkunov G. V., Kirichuk N. N., Chausova V. E., Kalinovskiy A. I., Popov R. S., Khudyakova Y. V., Chingizova E. A., Chingizov A. R., Isaeva M. P., Yurchenko A. N. Bioactive polyketides from the natural complex of the sea urchin-associated fungi Penicillium sajarovii KMM 4718 and Aspergillus protuberus KMM 4747 // Int. J. Mol. Sci. 2023. Vol. 24 (23). 16568. https://doi.org/10.3390/ijms242316568.
  18. Trinh P. T., Yurchenko A. N., Khmel O. O., Dieu T. V., Ngoc N. T., Girich E. V., Menshov A. S., Kim N. Y., Chingizova E. A., Van T. T., Lee J. S., Lee H.-S., Yurchenko E. A. Cytoprotective polyketides from sponge-derived fungus Lopadostoma pouzarii // Molecules. 2022. Vol. 27 (21). P. 7650. https://doi.org/10.3390/molecules27217650.
  19. Belousova E. B., Zhuravleva O. I., Yurchenko E. A., Oleynikova G. K., Antonov A. S., Kirichuk N. N., Chausova V. E., Khudyakova Y. V., Menshov A. S., Popov R. S., Menchinskaya E. S., Pislyagin E. A., Mikhailov V. V., Yurchenko A. N. New anti-hypoxic metabolites from co-culture of marine-derived fungi Aspergillus carneus KMM 4638 and Amphichorda sp. KMM 4639 // Biomolecules. 2023. Vol. 13 (5). P. 741. https://doi.org/10.3390/biom13050741.
  20. Kozhushnaya A. B., Kolesnikova S. A., Yurchenko E. A., Lyakhova E. G., Menshov A. S., Kalinovsky A. I., Popov R. S., Dmitrenok P. S., Ivanchina N. V. Rhabdastrellosides A and B: two new isomalabaricane glycosides from the marine sponge Rhabdastrella globostellata, and their cytotoxic and cytoprotective effects // Mar. Drugs. 2023. Vol. 21 (11). P. 554. https://doi.org/10.3390/md21110554.
  21. Guzii A. G., Makarieva T. N., Fedorov S. N., Menshov A. S., Denisenko V. A., Popov R. S., Yurchenko E. A., Menchinskaya E. S., Grebnev B. B., Iarotsckaia V. V., Kim N. Y., Stonik V. A. Toporosides A and B, Cyclopentenyl-Containing ω-Glycosylated Fatty Acid Amides, and Toporosides C and D from the Northwestern Pacific Marine Sponge Stelodoryx toporoki // J. Nat. Prod. 2022. Vol. 85 (4). P. 1186–1191. https://doi.org/10.1021/acs.jnatprod.2c00130.
  22. Yurchenko E. A., Kolesnikova S. A., Lyakhova E. G., Menchinskaya E. S., Pislyagin E. A., Chingizova E. A., Aminin D. L. Lanostane triterpenoid metabolites from a Penares sp. marine sponge protect Neuro-2a cells against paraquat neurotoxicity // Molecules. 2020. Vol. 25 (22). 5397 [1–44]. https://doi.org/10.3390/molecules25225397.
  23. Yurchenko E. A., Menchinskaya E. S., Pislyagin E. A., Chingizova E. A., Girich E. V., Yurchenko A. N., Aminin D. L., Mikhailov V. V. Cytoprotective activity of p-terphenyl polyketides and flavuside b from marine-derived fungi against oxidative stress in Neuro-2a Cells // Molecules. 2021. Vol. 26. 3618. https://doi.org/10.3390/molecules26123618.
  24. Yurchenko E. A., Khmel O. O., Nesterenko L. E., Aminin D. L. The Kelch/Nrf2 antioxidant system as a target for some marine fungal metabolites // Oxygen. 2023. Vol. 3 (4). P. 374–385. https://doi.org/10.3390/oxygen3040024.
  25. Aminin D., Polonik S. 1,4-naphthoquinones: some biological properties and application // Chem. Pharm. Bull. 2020. Vol. 68 (1). P. 46–57. https://doi.org/10.1248/cpb.c19-00911.
  26. Sabutski Y. E., Menchinskaya E. S., Shevchenko L. S., Chingizova E. A., Chingizov A. R., Popov R. P., Denisenko V. A., Mikhailov V. V., Aminin D. L., Polonik S. G. Synthesis and Evaluation of antimicrobial and cytotoxic activity of oxathiine-fused quinone-thioglucoside conjugates of substituted 1,4-naphthoquinones // Molecules. 2020. Vol 25 (16). 3577. https://doi.org/10.3390/molecules25163577.
  27. Polonik S., Likhatskaya G., Sabutski Y., Pelageev D., Denisenko V., Pislyagin E., Chingizova E., Menchinskaya E., Aminin D. Synthesis, cytotoxic activity evaluation and quantitative structure‐activity analysis of substituted 5,8‐dihydroxy‐1,4‐naphthoquinones and their o‐ and s‐glycoside derivatives tested against Neuro‐2a cancer cells // Mar. Drugs. 2020. Vol. 18 (12). 602. https://doi.org/10.3390/md18120602.
  28. Menchinskaya E., Chingizova E., Pislyagin E., Likhatskaya G., Sabutski Y., Pelageev D., Polonik S., Aminin D. Neuroprotective effect of 1,4-naphthoquinones in an in vitro model of paraquat and 6-OHDA-induced neurotoxicity // Int. J. Mol. Sci. 2021. Vol. 22. 9933. https://doi.org/10.3390/ijms22189933.
  29. Agafonova I., Chingizova E., Chaikina E., Menchinskaya E., Kozlovskiy S., Likhatskaya G., Sabutski Y., Polonik S., Aminin D., Pislyagin E. Protection activity of 1,4-naphthoquinones in rotenone-induced models of neurotoxicity // Mar. Drugs 2024. Vol. 22. P. 62. https://doi.org/10.3390/md22020062.
  30. Пислягин Е. А., Аминин Д. Л. Пуринергические P2X рецепторы как новые молекулярные мишени для поиска и создания новых лекарственных средств // Исследования природных соединений в Тихоокеанском институте биоорганической химии им. Г. Б. Елякова. Новые подходы и результаты. Владивосток, 2016. С. 45–51.
  31. Pislyagin E., Kozlovskiy S., Menchinskaya E., Chingizova E., Likhatskaya G., Gorpenchenko T., Sabutski Y., Polonik S., Aminin D. Synthetic 1,4-naphthoquinones inhibit P2X7 receptors in murine neuroblastoma cells // Bioorg. Med. Chem. 2021. Vol. 31. 115975 [1–13]. https://doi.org/10.1016/j.bmc.2020.115975.
  32. Kozlovskiy S., Pislyagin E., Menchinskaya E., Chingizova E., Likhatskaya G., Sabutski Y., Polonik S., Aminin D. Anti-Inflammatory Activity of 1,4-Naphthoquinones Blocking P2X7 Purinergic Receptors in RAW 264.7 Macrophage Cells // Toxins. 2023. Vol. 15. P. 47. https:// doi.org/10.3390/toxins15010047.
  33. Kozlovskiy S., Pislyagin E., Menchinskaya E., Chingizova E., Kaluzhskiy L., Ivanov A. S., Likhatskaya G., Agafonova I., Sabutski Y., Polonik S., Manzhulo I., Aminin D. Tetracyclic 1,4-naphthoquinone thioglucoside conjugate U-556 blocks the purinergic P2X7 receptor in macrophages and exhibits anti-inflammatory activity in vivo // Int. J. Mol. Sci. 2023. Vol. 24. 12370. https://doi.org/10.3390/ijms241512370.
  34. Kozlovskiy S., Pislyagin E., Menchinskaya E., Chingizova E., Sabutski Y., Polonik S., Agafonova I., Aminin D. Antinociceptive effect and anti-inflammatory activity of 1,4-naphthoquinones in mice // Explor. Neurosci. 2024. Vol. 3. P. 39–50. https://doi.org/10.37349/en.2024.00035.
  35. Menchinskaya E. S., Pislyagin E. A., Kovalchuk S. N., Davydova V. N., Silchenko A. S., Avilov S. A., Kalinin V. I., Aminin D. L. Antitumor activity of cucumarioside A2-2 // Chemotherapy. 2013. Vol. 59 (3). P. 181–191. https://doi.org/10.1159/000354156.
  36. Menchinskaya E. S., Aminin D. L., Avilov S. A., Silchenko A. S., Andryjashchenko P. V., Kalinin V. I., Stonik V. A. Inhibition of tumor cells multidrug resistance by cucumarioside A2-2, frondoside A and their complexes with cholesterol // Nat. Prod. Comm. 2013. Vol. 8 (10). P. 1377–1380. https://doi.org/10.1177/1934578X1300801009.
  37. Menchinskaya E., Gorpenchenko T., Silchenko A., Avilov S., Aminin D. Modulation of doxorubicin intracellular accumulation and anticancer activity by triterpene glycoside cucumarioside A2-2 // Mar. Drugs. 2019. Vol. 17 (11). 597 [1–9]. https://doi.org/10.3390/md17110597
  38. Menchinskaya E. S., Dyshlovoy S. A., Venz S., Jacobsen C., Hauschild J., Rohlfing T., Silchenko A. S., Avilov S. A., Balabanov S., Bokemeyer C., Aminin D. L., von Amsberg G., Honecker F. Anticancer activity of the marine triterpene glycoside cucumarioside A2-2 in human prostate cancer cells // Mar. Drugs. 2024. Vol. 22 (1). 20 [1–16]. https://doi.org/10.3390/md22010020.
  39. Silchenko A. S., Kalinovsky A. I., Avilov S. A., Popov R. S., Dmitrenok P. S., Chingizova E. A., Menchinskaya E S., Panina E. G., Stepanov V. G., Kalinin V. I., Stonik V. A. Djakonoviosides A, A1, A2, B1–B4 – triterpene monosulfated tetra- and pentaosides from the sea cucumber Cucumaria djakonovi: The first finding of a hemiketal fragment in the aglycones; activity against human breast cancer cell lines // Int. J. Mol. Sci. 2023. Vol. 24 (13). 11128 [1–24]. https://doi.org/10.3390%2Fijms241311128.
  40. Silchenko A. S., Kalinovsky A. I., Avilov S. А., Popov R. S., Chingizova E. A., Menchinskaya E. S., Zelepuga E. A., Panina E. G., Stepanov V. G., Kalinin V. I., Dmitrenok P. S. Sulfated triterpene glycosides from the Far Eastern sea cucumber Cucumaria djakonovi: Djakonoviosides C1, D1, E1, and F1; cytotoxicity against human breast cancer cell lines; quantitative structure–activity relationships // Mar. Drugs. 2023. Vol. 21 (12). 602 [1–29]. https://doi.org/10.3390/md21120602.
  41. Aminin D. L. Immunomodulatory properties of sea cucumber triterpene glycosides // Marine and Freshwater Toxins. 2016. Vol. 1. P. 381–401. https://doi.org/10.1007/978-94-007-6419-4_3.
  42. Aminin D., Pislyagin E., Astashev M. et al. Glycosides from edible sea cucumbers stimulate macrophages via purinergic receptors // Sci. Rep. 2016. Vol. 6 (1). 39683. https://doi.org/10.1038/srep39683.
  43. Pislyagin E. A., Dmitrenok P. S., Gorpenchenko T. Y., Avilov S. A., Silchenko A. S., Aminin D. L. Determination of cucumarioside A2-2 in mouse spleen by radiospectroscopy, MALDI-MS and MALDI-IMS // Eur. J. Pharm. Sci. 2013. Vol. 49 (4). P. 461–467. https://doi.org/10.1016/j.ejps.2013.05.017.
  44. Pislyagin E. A., Manzhulo I. V., Dmitrenok P. S., Aminin D. L. Cucumarioside A2-2 causes changes in the morphology and proliferative activity in mouse spleen // Acta Histochemica. 2016. Vol. 118. P. 387–392. http://dx.doi.org/10.1016/j.acthis.2016.03.009.
  45. Pislyagin E. A., Manzhulo I. V., Gorpenchenko T. Y., Dmitrenok P. S., Avilov S. A., Silchenko A. S., Wang Y-M., Aminin D. L. Cucumarioside A2-2 causes macrophage activation in mouse spleen // Mar. Drugs. 2017. Vol. 15 (11). 341. https://doi.org/10.3390%2Fmd15110341.
  46. Aminin D., Wang Y.-M. Macrophages as a “weapon” in anticancer cellular immunotherapy // Kaohsiung J. Med. Sci. 2021. Vol. 37 (9). P. 749–758. https://doi.org/10.1002/ kjm2.12405.
  47. Chuang W. H., Pislyagin E., Lin L.-Y., Menchinskaya E., Chernikov O., Kozhemyako V., Gorpenchenko T., Manzhulo I., Chaikina E., Agafonova I., Silchenko A., Avilov S., Stonik V., Tzou S.-C., Aminin D., Wang Y. M. Holothurian triterpene glycoside cucumarioside A2-2 induces macrophages activation and polarization in cancer immunotherapy // Cancer Cell Int. 2023. Vol. 23 (1). 292 [1–17]. https://doi.org/10.1186/s12935-023-03141-z.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Содержание рутина в регенерированных в пробирках растениях F. esculentum сорта Изумруд и гибрида Изумруд × Инзерская, полученных после воздействия питательных сред с цинком и выращенных in vitro в течение III–V пассажей. На врезке – химическая структура рутина

Скачать (142KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Визуальная оценка интенсивности сигнала на диффузионном изображении аксиального среза головного мозга крысы, полученного методом МРТ; на участках, выделенных желто-красным цветом, скорость диффузии выше, по сравнению с участками, представленными синим цветом (а). Количественное определение скорости диффузии воды, выполненное с помощью измерения коэффициента диффузии; снижение диффузии отмечено на графике розовой линией, указанной стрелкой (б)

Скачать (215KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Схема действия антибиотиков, мишенью которых является сортаза А. Фермент сортаза А – один из ключевых при образовании биопленок грамположительными бактериями Staphylococcus aureus (1), что при инфицировании клеток кожи приводит к торможению их пролиферации (2) и миграции (3). Ингибирование активности сортазы А (4) обеспечивает восстановление уровня пролиферации кератиноцитов (5) и их миграции (6)

Скачать (443KB)
Метаданные
5. Рис. 4. QSAR анализ связи химическая структура – нейропротекторная активность. Прогнозируемая нейропротекторная активность (в %) 1,4-NQs в зависимости от экспериментальных значений для линии клеток Neuro-2a в присутствии PQ (а) или 6-OHDA (б). Электростатическая карта, предсказывающая предпочтительные местоположения для гидрофобных участков (зеленый цвет), акцепторов водородных связей (синий цвет), доноров водородных связей (красный цвет) для неактивного U-193 (в) и высокоактивного нейропротектора U-623 (г)

Скачать (261KB)
Метаданные
6. Рис. 5. Схема действия производных 1,4-NQs U-443 и U-573, защищающих нейрональные клетки Neuro-2a и макрофагальные клетки RAW 264.7 от нейротоксического действия ротенона, оказывающих противовоспалительный эффект и восстанавливающих когнитивное поведение у животных с индуцированной ранней стадией БП

Скачать (343KB)
Метаданные
7. Рис. 6. 1,4-NQs модулируют функционирование Р2Х7 рецепторов. (а) – схема синтеза 1,4-нафтохинонтиоглюкозидов. (б) – влияние предварительной инкубации с 1,4-NQs (0,1; 1,0 и 5,0 мкМ), BBG (бриллиантовый синий G, 10 мкМ) и PPADS (пиридоксальфосфат-6-азофенил-2’,4’-дисульфоновая кислота, 50 мкМ) на вход ионов Ca2+, вызванный АТФ (2 мМ) в клетках нейробластомы Neuro-2a мыши. (в) – влияние предварительной инкубации клеток с 1,4-NQs (0,1; 1,0 и 10,0 мкМ) на поглощение EtBr. (г) – молекулярное моделирование; гомологическая модель тримерной структуры P2X7 рецептора мыши (mP2X7R, UniProt ID Q9Z1M0) в закрытой форме с 1,4-NQs. (д) – изображение клеток нейробластомы Neuro-2a мыши

Скачать (492KB)
Метаданные
8. Рис. 7. Изображения двумерных гель-электрофорезов белков клеток линии PC-3 в контроле (а) и после инкубирования в течение 48 ч с СА2-2 (б). Увеличенные изображения пятен на геле, соответствующие регулируемым белкам-мишеням, под действием СА2-2; знаком «+» обозначены пятна, соответствующие белкам, экспрессия которых менялась под действием СА2-2, знаком «—» – белки-мишени контрольных клеток (в). Диаграмма Венна влияния СА2-2 на экспрессию белков в опухолевых клетках простаты человека линии PC-3. Цифры показывают количество обнаруженных белков; стрелками указаны направления регулирования экспрессии (г)

Скачать (241KB)
Метаданные
9. Рис. 8. Стратегия клеточной противораковой иммунотерапии. Мышиные макрофаги активировали тритерпеновым гликозидом CA2-2 и поляризовали в противоопухолевый M1 фенотип ex vivo. Затем макрофаги нагружали наночастицами, конъюгированными с флуоресцентным зондом ближнего инфракрасного диапазона CyTE777. Активированные и поляризованные флуоресцентные М1 макрофаги вводили мышам с опухолью для визуализации и локализации макрофагов, а также для проведения противоопухолевой клеточной иммунотерапии

Скачать (342KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024