Ионно-индуцированное гелеобразование альгината в присутствии аланингидроксиматных металлакраунов Sr(II), Са(II) И La(III)

Capa

Citar

Texto integral

Acesso aberto Acesso aberto
Acesso é fechado Acesso está concedido
Acesso é fechado Somente assinantes

Resumo

Впервые исследована возможность использования водорастворимых гетероядерных металламакроциклических комплексов Sr(II)‒Cu(II), Са(II)‒Cu(II), La(III)‒Cu(II) в качестве сшивающих агентов для альгинатных гидрогелей. Экспериментально продемонстрирована возможность ион-индуцированного сшивания альгината катионами металлакраунов. Методом экструзии синтезированы гидрогелевые альгинатные микросферы c применением металлакраунов в качестве сшивающих центров. Установлено, что степень сшивки гидрогелей зависит от природы центрального элемента металлакрауна. По своим сшивающим способностям рассмотренные металллакрауны (МС(М)) располагаются в следующий ряд: МС(La) > МС(Sr) > МС(Ca).

Texto integral

Acesso é fechado

Sobre autores

М. Батенькин

Институт металлоорганической химии им. Г.А. Разуваева Российской академии наук

Autor responsável pela correspondência
Email: batenkinmax@iomc.ras.ru
Rússia, 603137, г. Нижний Новгород, ул. Тропинина, 49

Н. Анисимова

Институт металлоорганической химии им. Г.А. Разуваева Российской академии наук

Email: batenkinmax@iomc.ras.ru
Rússia, 603137, г. Нижний Новгород, ул. Тропинина, 49

М. Захарина

Институт металлоорганической химии им. Г.А. Разуваева Российской академии наук

Email: batenkinmax@iomc.ras.ru
Rússia, 603137, г. Нижний Новгород, ул. Тропинина, 49

Г. Забродина

Институт металлоорганической химии им. Г.А. Разуваева Российской академии наук

Email: batenkinmax@iomc.ras.ru
Rússia, 603137, г. Нижний Новгород, ул. Тропинина, 49

М. Каткова

Институт металлоорганической химии им. Г.А. Разуваева Российской академии наук

Email: batenkinmax@iomc.ras.ru
Rússia, 603137, г. Нижний Новгород, ул. Тропинина, 49

С. Чесноков

Институт металлоорганической химии им. Г.А. Разуваева Российской академии наук

Email: batenkinmax@iomc.ras.ru
Rússia, 603137, г. Нижний Новгород, ул. Тропинина, 49

Bibliografia

  1. Pavlyuchenko V.N., Ivanchev S.S. // Polymer Science А. 2009. V. 51. №7. P.743.
  2. Li Y., Rodrigues J., Tomas H. //Chem. Soc. Rev. 2012. №41. P. 2193.
  3. Grant G.T., Morris E.R., Rees D.A., Smith P.J.C., Thom D. // Federation Eur. Biochemi. Soc. (FEBS) Lett. 1973. V.32 №1. P. 195.
  4. Coviello T., Matricardi P., Marianecci C., Alhaique F. // J. Control Release. 2007. V.119. №1. P. 5.
  5. Kuen Yong Lee, Mooney D.J. // Prog. Polym. Sci. 2012. V. 37. № 1. P. 106.
  6. Giri T. K. // Nanoarchitectonics for Smart Delivery and Drug Targeting / Ed. by A.M. Holban, A.M. Grumezescu. Oxford: Elsevier, 2016. P. 565.
  7. Gorshkova M.Yu., Volkova I.F., Grigoryan E.S., Valuev L.I. // Polymer Science Б. 2020. V. 62. № 6. P.678.
  8. Chitosan Based Biomaterials. Tissue Engineering and Therapeutics. / Ed. by J. Amber. Jennings, Joel. D. Bumgardner. Duxford: Woodhead Publ., 2017. V.2.
  9. Бикбов М.М., Хуснитдинов И.И., Сигаева Н.Н., Вильданова Р.Р// Практич. медицина. 2017. Т.110. № 9. С.131.
  10. Dang J.M., Leong K.W. // Adv. Drug. Deliver Rev. 2006. V.58. № 4. P. 487.
  11. Benalaya I., Alves G., Lopes J., Silva L.R. // Int. J. Mol. Sci. 2024. V.25. № 2. P. 31.
  12. Cao Y., Mezzenga R. // Nat. Food. 2020. V. 1. № 2. P. 106
  13. Mitura S., Sionkowska A., Jaiswal A //. J Mater Sci., Mater Med. 2020. V.31. Art.50.
  14. Kakita H., Kamishima H. // J. Appl. Phycol. 2009. V.20. № 5. P. 93.
  15. Biopolymers, Polysaccharides II: Polysaccharides from Eukaryotes / Ed. by A.Steinbu¨chel. Weinheim: Wiley, 2002.
  16. Alginates: Biology and Applications. Microbiology Monographs. / Ed. by Bernd H. A Rehm. New York: Springer, 2009. V. 13
  17. Carbohydrate Biotechnology Protocols / Ed. by C. Bucke. Totowa: Humana Press, 1999.
  18. Cattelan G., Gerbolés A. Guerrero, Foresti R., Pramstaller P.P., Rossini A., Miragoli M., Malvezzi C. Caffarra // Frontiers Bioeng. Biotechnol. 2020. V.8. P.1.
  19. Cao L., Lu W., Mata A., Nishinari K., Fang Y. // Carbohydr. Polym. 2020. V.242. P.116389.
  20. Donati I., Holtan S., Mørch Y.A., Borgogna M., Dentini M., Skjåk-Bræk G. // Biomacromolecules. 2005. V.6. P. 1031.
  21. Len’shina N.A., Konev A.N., Baten’kin A.A., Bar dina P.S., Cherkasova E.I., Kashina A.V., Zagai nova E.V., Zagainov V.E., Chesnokov S.A.// Polymer Science Б. 2021. V. 63. № 6. P.640.
  22. Rowley JA, Madlambayan G, Mooney DJ. // Biomaterials. 1999. V.20. № 1. P. 45.
  23. Alsberg E, Anderson KW, Albeiruti A, Franceschi RT, Mooney DJ. // J. Dent. Res. 2001. V.80. № 11. P.2025.
  24. Grigor’ev D., Musabekov K.V., Musabekov N.K., Kusainova Zh.Zh. // Polymer Science. А. 2017. V. 59. № 4. P.506.
  25. Шилова С.В., Миргалеев Г.М., Барабанов В.П.// Polymer Science A. 2022. Т. 64. № 5.
  26. Harper B.A., Barbut S., Lim L.-T., Marcone M.F. // J. Food Sci. 2014. V. 79. № 4. P. E562.
  27. Urbanova M., Pavelkova M., Czernek J., Kubova K., Vyslouzil J., Pechova A., Molinkova D., Vyslouzil J., Vetchy D., Brus J. // Biomacromolecules. 2019. V. 20. № 11. P. 4158.
  28. Athas J.C., Nguyen C.P., Kummarbc S., Raghavan S.R. // Soft Matter. 2018. 14. P. 2735.
  29. Hu Chuhuan, Lu Wei, Mata Analucia, Nishinari Katsuyoshi, Fang Yapeng // Int. J. Biol. Macromolecules. 2021.177. P. 578.
  30. Xiaoyan He, Leila Abdoli, Hua Li // Colloids Surf. B. 2018. V.162. P. 220.
  31. Mørch YÄ RR A., Donati Ivan, Strand Berit L., and Skja°k-Bræk Gudmund // Biomacromolecules. 2006. V.7. P. 1471.
  32. Donati Ivan, Asaro Fioretta, and Paoletti Sergio // J. Phys. Chem. B. 2009. V.113. P. 12877.
  33. Dodero A., Pianella L., Vicini S., Alloisio M., Ottonelli M., Castellano M. // Eur. Polym. J. 2019. V. 118. P. 586.
  34. Gotoh Yasuo, Makita Junya, Ohkoshi Yutaka, Nagura Masanobu // Polym. J. 2000. V. 32. 10. P. 838.
  35. Liu Fengyi, Carlos Luis D., Ferreira Rute A. S., Joa˜o Rocha, Gaudino Maria Concetta, Robitzer Mike, Quignard Franc¸oise // Biomacromolecules. 2008.V. 9. P.1945.
  36. Qianmin Ma, Qianming Wang // Carbohydr. Polymers. 2015.V.133. P. 19.
  37. Mezei G., Zaleski C.M., Pecoraro V.L. // Chem. Rev. 2007. V.107. P. 4933.
  38. Tegoni M., Remelli M. // Coord. Chem. Rev. 2012. P. 256.
  39. Ostrowska M., Fritsky I.O., Gumienna-Kontec ka E., Pavlishchuk A.V. // Coord. Chem. Rev. 2016. P. 327.
  40. Pavlyukh Y., Rentschler E., Elmers H.J., Hubner W., Lefkidis G. // Phys. Rev. B. 2018. V.97. P.214408.
  41. Katkova M.A. // Russ. J. Coord. Chem. 2018. V.44. P. 284.
  42. Muravyeva M. S., Zabrodina, G. S., Samsonov M. A., Kluev E. A., Khrapichev A. A., Katkova M. A., Mu khina I. V. // Polyhedron. 2016. V.114. P.165.
  43. Katkova M. A., Zabrodina G. S., Baranov E. V., MuravyevaM. S., Kluev E. A., Shavyrin A. S., Zhigulin G. Y., Ket kov S. Y. // Appl. Organomet. Chem. 2018. V.32. № e4389.
  44. Katkova M.A., Zabrodina G.S., Zhigulin G.Yu., Baranov E.V., Trigub M., Terentiev A., Ketkov SюYu. // Dalton Transactions. 2019. V.10. P.1039.
  45. Katkova M.A., Zabrodina G.S., Rumyantcev R.V., Zhigulin G.Yu., Muravyeva M.S., Shavyrin A.S., Sheven D.G. Ketkov S.Yu. // Inorg. Chem. 2023. V.62. P.3827.
  46. Rumyantcev R.V., Zhigulin G.Yu., Zabrodina G.S., Katkova M.A., Ketkov S.Yu., Fukin G.K. // Mendeleev Commun. 2023. V.33. P.41.

Arquivos suplementares

Arquivos suplementares
Ação
1. JATS XML
Baixar
2. Fig. 1. Experimental scheme: 1 – syringe, 2 – sodium alginate solution, 3 – alginate microdroplets, 4 – container with MS(M) gelling solution, 5 – magnetic stirrer, 6 – hydrogel microspheres, 7 – container with washing solution. Colored figures can be viewed in the electronic version.

Baixar (94KB)
Metadados
3. Fig. 2. Changes in the absorption spectra of MS(Sr) solutions of gelling (a) and washing (b) solutions. Time 0 (1), 0.5 (2), 6 (3) and 20 min (4) (a); 0.5 (1), 2 (2), 6 (3) and 20 min (4) (b).

Baixar (150KB)
Metadados
4. Fig. 3. Changes in the concentrations of MC(Ca) in samples of the gelling solution (Ci) (a) and in the washing solution (Cwash) (b). The concentration of MC(Ca) in the initial solutions is 50 (1), 25 (2) and 12.5 mg/ml (3).

Baixar (160KB)
Metadados
5. Fig. 4. Alginate microspheres cross-linked with MS (Ca) in gelling solutions of concentrations of 50 (a), 25 (b) and 12.5 mg/ml (c).

Baixar (251KB)
Metadados
6. Fig. 5. Changes in the concentrations of MS(Sr) in samples of the gelling solution (Ci) (a) and in the washing solution (Cwash) (b). The concentration of MS(Sr) in the initial solutions is 50 (1), 25 (2) and 12.5 mg/ml (3).

Baixar (159KB)
Metadados
7. Fig. 6. Alginate microspheres cross-linked with MS(Sr) in gelling solutions of concentrations of 50 (a), 25 (b) and 12.5 mg/ml (c).

Baixar (196KB)
Metadados
8. Fig. 7. Changes in the concentrations of MS(La) in the samples of the gelling solution (Ci). The concentration of MS(La) in the initial solutions is 50 (1), 25 (2) and 12.5 mg/ml (3).

Baixar (129KB)
Metadados
9. Fig. 8. Alginate microspheres cross-linked with MS(La) in a gelling solution with a concentration of 50 mg/ml.

Baixar (276KB)
Metadados
10. Scheme

Baixar (217KB)
Metadados

Declaração de direitos autorais © Russian Academy of Sciences, 2024