Modern problems of preclinical studying feed additives for animals and ways to solve them

Мұқаба

Дәйексөз келтіру

Толық мәтін

Аннотация

Resource-saving technology in agriculture is the use of stimulating additives in animal feeding rations that promote better absorption of feed. One of the measures to prevent toxicosis in industrial livestock and poultry farming is to determine the toxicity of feed. The variety of existing methods makes it possible to determine the level and class of drug toxicity at the initial stage. In the developed classification for veterinary drugs, the cumulation coefficient, therapeutic breadth index and dose level of toxic effect are used, which makes it possible to predict the nature and degree of their danger at the stage of preclinical study of feed additives. To determine the listed indicators, it is necessary to establish LD50 and the cumulation coefficient. Since feed additives are introduced into the body through the digestive tract, during preclinical studies they are studied and classified according to their hepatotoxic effect. Bilirubin, albumin, and enzyme activity contained in the blood (glutamate dehydrogenase, alanine aminotransferase, aspartate aminotransferase, alkaline phosphatase, and the ratio of alanine aminotransferase to alkaline phosphatase) are used as markers. It is necessary to determine the de Ritis, Schmidt coefficient and the R index. This will minimize the intake of toxic feed additives into the animals’ bodies and will contribute to an increase in their productivity.

Толық мәтін

Для укрепления продовольственной независимости Российской Федерации необходимо развивать отрасли агропромышленного комплекса, обеспечивать правильную организацию сельскохозяйственного производства, контролируя безопасность кормовых добавок для животных.

По данным ФАО, в 2050 году численность населения мира достигнет 9,6 млрд чел. и спрос на продукцию животноводства увеличится на 70%. [16] Следует принимать меры по улучшению продуктивности животных. Для качества и полноты рационов применяют различные добавки и биологически активные вещества природного и синтетического происхождения. Введение стимулирующих кормовых добавок способствует усвоению корма, относится к ресурсосберегающим технологиям в сельском хозяйстве. Кормовые добавки могут активизировать обменные процессы, обладают детоксицирующими, лечебно-профилактическими свойствами, их качество – важное условие повышения продуктивности сельскохозяйственных животных, наряду с их генетическим потенциалом, санитарно-гигиеническими условиями содержания и квалифицированным ветеринарным надзором. Все это в комплексе отвечает за общую токсичность кормов, то есть способность вещества или продукта в нормальных дозировках вызывать негативную реакцию у живого организма. Одна из мер профилактики токсикозов животных и птиц – заблаговременное определение токсичности кормов и кормовых добавок. [3, 13, 14] Проведение доклинических исследований (ДКИ) – обязательная процедура для занесения кормовой добавки в Государственный реестр, регистрации в Россельхознадзоре. Все действия необходимо выполнять согласно Правилам гуманного обращения с лабораторными животными в соответствии с Директивой 2010/63/US от 22 сентября 2010 года. [19] Содержание и уход за экспериментальными животными должен соответствовать ГОСТ 33216-2014. [6]

Цель работы – анализ методов доклинического исследования кормовых добавок для предотвращения попадания токсинов в организм животных.

Существуют руководства, стандартные методические указания по организации и проведению доклинических исследований медицинских препаратов, в отношении ветеринарных до недавнего времени такие правила отсутствовали. Нормативные документы в области доклинического изучения кормовых добавок – Приказ министерства сельского хозяйства России от 06.03.2018 № 101 и ГОСТ 33044-2014 «Принципы надлежащей лабораторной практики». [5, 15]

ДКИ кормовых добавок включает определение общей и репродуктивной токсичности, тератогенности, аллергенности, иммуннотоксичности, фармакокинетики, фармакодинамики, мутагенности, канцерогенности. Исследования проводят на лабораторных животных с подробным отчетом о способах введения и применяемых концентрациях. Также устанавливают предполагаемые дозы для продуктивных животных. Важный показатель при доклиническом испытании кормовых добавок – определение среднесмертельной дозы или концентрации. Многообразие методик позволяет на начальном этапе узнать характер действия, степень и класс токсичности препарата. Для предварительной оценки острой токсичности наиболее удобно определять ЛД50 по Deichmann и Le Blanc (1943). [18] Не все используемые в лекарственной токсикологии методы подходят для оценки ЛД16, ЛД84 и ЛД99, с помощью которых можно установить степень опасности препарата, зону его токсического действия. Изучение симптомов интоксикации лабораторных животных помогает получить информацию о характере действия будущего препарата, избирательность токсического влияния кормовых добавок.

Существует методика определения острой токсичности химической продукции. [12] Ее применение недопустимо, так как в ГОСТе 32419-2013 «Классификация опасности химической продукции» содержится положение о том, что требования стандарта не распространяются на готовые лекарственные средства и препараты ветеринарного назначения. [8] В связи с этим отсутствует необходимость в ГОСТе 32296-2013 «Методы испытаний по воздействию химической продукции на организм человека. Основные требования к проведению испытаний по оценке острой токсичности при внутрижелудочном поступлении методом фиксированной дозы». Данный метод основан на введении животным серий фиксированных доз и не позволяет определить среднюю величину смертельной дозы. [4] Игнорирование ГОСТов 12.0007-76 и замена ГОСТами для изучения химической продукции приводит к получению необъективной информации при токсикологическом изучении кормовых добавок. [7]

Разработана наиболее оптимальная классификация степени опасности токсического действия ветеринарных препаратов (ГОСТ 12.1.007-76), в которой рекомендовано использовать коэффициент кумуляции, индекс широты терапевтического действия (ЛД50/терапевтическая доза). Дозовый уровень токсического действия в эксперименте помогает прогнозировать его характер и степень на стадии доклинического изучения кормовых добавок. [16] Для определения перечисленных показателей необходимо определить ЛД50 и коэффициент кумуляции.

Важный этап доклинических токсикологических исследований КД – изучение хронической, субхронической токсичности и кумулятивных свойств. [1]

Существующие классификации оценки кумулятивного эффекта промышленных ядов и пестицидов не отвечают задачам, решаемым при ДКИ ветеринарных препаратов и кормовых добавок.

Разделяют материальный, функциональный и смешанный виды кумуляции. Для предварительной оценки функциональной кумуляции определяют коэффициент кумуляции по методу С.П. Черкинского. [2] Степень функциональной кумуляции находят методами, предусматривающими ежедневное введение в организм животного одинаковых доз препарата, взятых в определенных частях (1/10, 1/20, 1/50) от среднесмертельной дозы. При этом каждое животное получает суммарно в течение двух-четырех месяцев 10, 5 и 2 ЛД50 вещества соответственно.

Материальная кумуляция – это накопление в организме токсикантов. Такой вид характерен для длительно действующих ксенобиотиков, которые медленно элиминируют из-за связывания в организме с различными биосубстратами. Кумулятивное действие кормовых добавок во многом зависит от токсикокинетических факторов (процессы всасывания, биотранспорт, распределение, биотрансформация и экскреция из организма). Количественную оценку кумулятивного действия КД можно проводить с одним из существующих методических приемов, в зависимости от задачи исследования. Наиболее адекватный критерий показателя – величина суточного элиминирования (процент к введенной дозе). Зная ее, можно определить время, через которое в организме будет накапливаться токсическая или смертельная доза препарата.

Так как КД попадают в организм через пищеварительный тракт и печень, при проведении доклинических исследований необходимо классифицировать их по гепатотоксическому действию.

При доклиническом изучении токсичности кормовых добавок обязательно биохимическое исследование крови животных для оценки степени поражения органов. Состав крови чувствителен к изменениям, происходящим в организме. Важно оценивать не резкие, патологические изменения в обмене веществ у животных, а незначительные сдвиги, происходящие в пределах физиологической нормы. [17]

Изучая биохимические параметры крови (общий белок и его фракции, индекс АГ, мочевина и креатинин, ферменты переаминирования АсАТ и АлАТ, гемоглобин, эритроциты и среднее содержание гемоглобина в эритроците), можно диагностировать функциональное состояние систем и органов организма, выявить воспалительные процессы, дисбаланс микроэлементов и нарушение водно-солевого обмена.

Гепатотоксическое действие кормовых добавок на подопытных животных определяют по коэффициентам де Ритиса (АсАТ / АлАТ), Шмидта (КШ) и индексу R. [19] Коэффициент Шмидта рассчитывают по формуле:

КШ=АсАТ+АлАТГлДГ

где АсАТ – аспартатаминотрансфераза, Е/л; АлАТ – аланинаминотрансфераза, Е/л; ГлДГ – глутаматдегидрогеназа, Е/л.

Индекс R – отношение активности АлАТ и щелочной фосфатазы (ЩФ). [11]

АлАТ и АсАТ – внутриклеточные ферменты, участвующие в реакциях трансаминирования и непрямого дезаминирования аминокислот. Наибольшая активность АлАТ – в гепатоцитах, АсАТ – сердечной мышце, меньшая – в печени и других органах. АлАТ присутствует только в цитоплазме, АсАТ – в митохондриях (80% печеночного АсАТ) и цитоплазме. Соотношение АсАТ/АлАТ обычно составляет 2,5/1. Но при нормальном обновлении гепатоцитов активность АсАТ и АлАТ в сыворотке крови практически одинакова. Период полувыведения АсАТ в два раза короче (18 ч), чем АлАТ (36). [10] Увеличение коэффициента де Ритиса свидетельствует о хронических процессах, связанных с поражением паренхимы печени вследствие интоксикации организма. [20]

Повышение активности энзимов переаминирования отражает повреждение и гибель гепатоцитов. Активность ферментов может нарушаться в результате физиологических изменений и из-за патологических процессов, сопровождающихся повышением проницаемости мембран. Энзимы печени находятся в мембране, цитоплазме или митохондриях гепатоцитов. Изменение активности ферментов, расположенных в мембране или цитоплазме гепатоцитов (лактатдегидрогеназа, аминотрансферазы и щелочная фосфатаза), характерно для острого процесса, поражение митохондриальных ферментов (глутаматдегидрогеназа, митохондриальная АсАТ) свидетельствует о развитии некроза печени.

Абсолютно специфических маркеров для диагностики заболеваний печени не существует, так как энзимы присутствуют в клетках различных органов и тканей. Для диагностики поражения ткани печени важно определить изменения активности различных ферментов и их соотношения. Лекарственное поражение печени может быть гепатоцитарным, холестатическим и смешанным. [10]

Совет международных организаций «CIOMS» предложил классифицировать типы поражения печени на основании изменений активности АлАТ, щелочной фосфатазы и R-индекса (см. таблицу). [11]

 

Тип поражения печени

Тип

R

Активность

ЩФ

АлАТ

Гепатоцитарный

>5

<ВПФН

>2 х ВПФН

Холестатический

<2

>2 х ВПФН

<ВПФН

Смешанный

2–5

>2 х ВПФН

>2 х ВПФН

Примечание. R = АлАТ / ЩФ; ВПФН – верхний предел физиологической нормы.

 

Если при введении эффективной (терапевтическая) дозы происходит повышение активности АлАТ и АсАТ в 1,5…5,0 раза, по сравнению с верхней границей нормы, это соответствует умеренной гиперферментемии, 6…10 раз – средней, более, чем в 10 раз – высокой. Повышение активности АлАТ и АсАТ свидетельствует о выраженности синдрома цитолиза, но прямо не указывает на глубину нарушения функции печени. [9]

Гепатоцитарный тип поражения печени характеризуется повышением активности АлАТ более чем в два раза относительно ВПФН (АлАТ/ЩФ ≥ 5), холестатический – ростом активности щелочной фосфатазы более чем в два раза (АлАТ/ЩФ ≤ 2), смешанный – повышением активности АлАТ и ЩФ более чем в два раза (АлАТ/ЩФ – 2…5 раз). Гепатоцитарное поражение чаще других видов (холестатический и смешанный) характеризуется тяжелым течением. [10] Выявление вышеперечисленных изменений при доклиническом изучении кормовой добавки на лабораторных и целевых животных будет свидетельствовать о ее гепатотоксическом действии.

Таким образом, при проведении токсикологического исследования КД необходимо изучить их безопасность и гепатотоксичность. Это позволит минимизировать поступление токсинов в организм животных и будет способствовать росту их продуктивности.

×

Авторлар туралы

E. Rakhmatullin

Federal Center for Toxicological, Radiation and Biological Safety of the Russian Federation

Хат алмасуға жауапты Автор.
Email: amil59@yandex.ru

Grand PhD in Veterinary Sciences

Ресей, Kazan, Republic of Tatarstan

I. Kadikov

Federal Center for Toxicological, Radiation and Biological Safety of the Russian Federation

Email: amil59@yandex.ru

Grand PhD in Biological Sciences

Ресей, Kazan, Republic of Tatarstan

E. Kurshakova

Federal Center for Toxicological, Radiation and Biological Safety of the Russian Federation

Email: amil59@yandex.ru

PhD in Biological Sciences

Ресей, Kazan, Republic of Tatarstan

D. Sagdeev

Federal Center for Toxicological, Radiation and Biological Safety of the Russian Federation

Email: amil59@yandex.ru

PhD in Veterinary Sciences

Ресей, Kazan, Republic of Tatarstan

A. Korchemkin

Federal Center for Toxicological, Radiation and Biological Safety of the Russian Federation

Email: amil59@yandex.ru

PhD in Biological Sciences

Ресей, Kazan, Republic of Tatarstan

I. Vafin

Federal Center for Toxicological, Radiation and Biological Safety of the Russian Federation

Email: amil59@yandex.ru

PhD in Biological Sciences

Ресей, Kazan, Republic of Tatarstan

G. Galyautdinova

Federal Center for Toxicological, Radiation and Biological Safety of the Russian Federation

Email: amil59@yandex.ru

PhD in Biological Sciences

Ресей, Kazan, Republic of Tatarstan

A. Malanev

Federal Center for Toxicological, Radiation and Biological Safety of the Russian Federation

Email: amil59@yandex.ru

PhD in Biological Sciences

Ресей, Kazan, Republic of Tatarstan

G. Yamalova

Federal Center for Toxicological, Radiation and Biological Safety of the Russian Federation

Email: amil59@yandex.ru

Junior Researcher

Ресей, Kazan, Republic of Tatarstan

K. Khalikova

Federal Center for Toxicological, Radiation and Biological Safety of the Russian Federation

Email: amil59@yandex.ru

PhD in Veterinary Sciences

Ресей, Kazan, Republic of Tatarstan

Әдебиет тізімі

  1. Arzamascev E.V., Gus’kova T.A., Berezovskaya I.V. i dr. Metodicheskie ukazaniya po izucheniyu obshchetoksicheskogo dejstviya farmakologicheskih veshchestv // Rukovodstvo po eksperimental’nomu (doklinicheskomu) izucheniyu novyh farmakologicheskih veshchestv. M.: OAO Izdatel’stvo “Medicina”, 2005. S. 41–54.
  2. Gelashvili D.B., Bezel’ V.S., Romanova E.B. i dr. Principy i metody ekologicheskoj toksikologii / Nizhnij Novgorod: Nizhegorodskij gosuniversitet. 2015. 192 s.
  3. Golovnya E.Ya. Integral’naya ocenka toksichnosti kormov i kormovyh dobavok: dis. ... kand. biol. nauk. 2003. 138 s.
  4. GOST 32296-2013 «Metody ispytanij po vozdejstviyu himicheskoj produkcii na organizm cheloveka. Osnovnye trebovaniya k provedeniyu ispytanij po ocenke ostroj toksichnosti pri vnutrizheludochnom postuplenii metodom fiksirovannoj dozy». M.: Standartinform, 2014.
  5. GOST 33044-2014 «Principy nadlezhashchej laboratornoj praktiki» ot 20 noyabrya 2014 goda. docs.cntd.ru.
  6. GOST 33216-2014. «Rukovodstvo po soderzhaniyu i uhodu za laboratornymi zhivotnymi. Pravila soderzhaniya i uhoda za laboratornymi gryzunami i krolikami». M.: Standartinform, 2019. 15 s.
  7. GOST 12.1.007-76. “Vrednye veshchestva. Klassifikaciya i obshchie trebovaniya bezopasnosti”. M.: Standartinform, 2007.
  8. GOST 32419-2013 “Klassifikaciya opasnosti himicheskoj produkcii. Obshchie trebovaniya”. M.: Standartinform, 2014.
  9. Davydova A.V. Klinicheskaya interpretaciya biohimicheskogo analiza krovi pri zabolevaniyah pecheni: uchebnoe posobie dlya studentov / GBOU VPO IGMU Minzdrava Rossii. Irkutsk: IGMU, 2013. S. 7–9.
  10. Dorofejkov V.V., Borisova I.V., Tarasova M.A. i dr. Laboratornaya diagnostika lekarstvenno-inducirovannyh porazhenij pecheni pri beremennosti // Translyacionnaya medicina. 2017. № 4 (3). S. 35–44. https://doi.org/10.18705/2311-4495-2017-4-3-35-44.
  11. Ivashkin V.T., Baranovskij A.YU., Rajhel’son K.L. i dr. Lekarstvennye porazheniya pecheni (klinicheskie rekomendacii dlya vrachej) // Rossijskij zhurnal gastroenterologii, gepatologii, koloproktologii. 2019. № 29 (1). S. 101–131. https://doi.org/10.22416/1382-4376-2019-29-1-101-131.
  12. Kargopol’ceva D.R., Kryshen’ K.L., Makarova M.N., Makarov V.G. Re¬gulyatornye i metodicheskie aspekty doklinicheskih i klinicheskih issledovanij kormovyh dobavok dlya zhivotnyh. Laboratornye zhivotnye dlya nauchnyh issledovanij. 2018. № 3. https://doi.org/10/29926/2618723X-2018-03-11.
  13. Koshchaev A.G., Grankina N.A., Borisenko V.V., Nikolaenko V.I. Izuchenie toksikologicheskogo dejstviya probioticheskoj kormovoj dobavki // Molodoj uchenyj. 2015. № 5.1. S. 12–14.
  14. Lysenko Yu.A., Luneva A.V. Izuchenie vliyaniya probioticheskoj kormovoj dobavki «Promomiks S» na produktivnost’ i biobezopasnost’ produkcii pticevodstva // ScienceTime. 2014. № 5 (5). S. 112–122.
  15. Prikaz Minsel’hoza ot 6 marta 2018 g. № 101 “Ob utverzhdenii pravil provedeniya doklinicheskogo issledovaniya lekarstvennogo sredstva dlya veterinarnogo primeneniya, klinicheskogo issledovaniya lekarstvennogo preparata dlya veterinarnogo primeneniya, issledovaniya bioekvivalentnosti lekarstvennogo preparata dlya veterinarnogo primeneniya”.
  16. Rahmatullin E.K., Sklyarov O.D. Izuchenie toksichnosti veterinarnyh preparatov na doklinicheskom etape // Vestnik rossijskoj sel’skohozyajstvennoj nauki. 2019. № 5. S. 61–64.
  17. Taranov M.T. Izuchenie sdvigov obmena veshchestv u zhivotnyh // Zhivotnovodstvo. 1983. № 9. S.49-50.
  18. Deichmann W. B. et al. Determination of the approximate lethal dose with about six animals J. Ind. Hyg. Toxicol. (1943)
  19. Directive 2010/63/EU of The European Parliament and of The Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes, L 276/52.
  20. The De Ritis Ratio: The Test of Time Mona Botros, Kenneth A Sikaris Clin Biochem Rev. 2013. V. 34 (3). PP. 117–130.

Қосымша файлдар

Қосымша файлдар
Әрекет
1. JATS XML

© Russian Academy of Sciences, 2024

Creative Commons License
Бұл мақала лицензия бойынша қолжетімді Creative Commons Attribution 4.0 International License.