Функциональная роль генов в ROH островках у кур породы Чешская Золотистая
- Авторы: Смарагдов М.Г.1
-
Учреждения:
- Всероссийский научно-исследовательский институт генетики и разведения сельскохозяйственных животных – филиал федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный Научный Центр Животноводства-ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста» (ВНИИГРЖ)
- Выпуск: № 2 (2024)
- Страницы: 74-78
- Раздел: Зоотехния
- URL: https://permmedjournal.ru/2500-2082/article/view/659365
- DOI: https://doi.org/10.31857/S2500208224020151
- ID: 659365
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Современные технологии позволяют идентифицировать гомозиготные районы хромосом, возникающие в результате селекции животных. В статье представлены результаты, полученные при генотипировании кур с использованием чипа Illumina Chicken 60KSNP iSelect Bead Chip.Впервые был осуществлен полногеномный анализ протяженных гомозиготных последовательностей SNPs (ROH) в геноме кур породы Чешcкая Золотистая. Среднее количество ROH сегментов в геноме кур составило 143 ± 8. Установлено, что они имеют тенденцию к случайному распределению в хромосомах. Исходя из полученных данных, предложено запретить применение разрешенных гетерозиготных SNPs в ROH сегментах для предотвращения переоценки результатов ROH анализа. Рассчитанный из ROH данных средний коэффициент инбридинга у кур породы Чешcкая Золотистая равен 0,34 ± 0,03. В хромосомах кур 2, 3, 9 и 22 обнаружены ROH островки. В них расположены гены, ассоциированные с иммунитетом, деградацией нейронов, весом сумки Фабрициуса, ожирением, пигментацией пера и регуляцией генов теплового шока. Таким образом, у Чешской Золотистой породы кур селекция и сопровождающий ее инбридинг повлиял на гены, участвующие в перечисленных выше биологических процессах.
Ключевые слова
Полный текст
Одомашнивание кур сопровождалось селекцией, способствующей выведению большого разнообразия пород, которые отличаются по генотипу и фенотипу. Следовательно, кур можно считать идеальной моделью для генетических исследований о влиянии селекции на инбридинг и выявление генов, находящихся в районах, затронутых инбридингом. Инбридинг приводит к образованию протяженных гомозиготных последовательностей SNPs (ROH) в хромосомах животных. С появлением современных технологий (чипы, позволяющие обнаружить однонуклеотидный полиморфизм (SNP) в геноме животных) стало возможным идентифицировать в хромосомах ROH сегменты. Предложено несколько вариантов программного обеспечения сканирования генома животных для выявления ROH сегментов. [16] Такие исследования проведены у многих видов сельскохозяйственных животных. [14] На практике используют два подхода для сканирования генома – последовательное и заданной рамкой. Для обнаружения ROH у кур породы Чешская Золотистая (ЧЗ) мы применяли метод последовательного сканирования генома, так как он позволяет идентифицировать больше ROH сегментов. В результате продолжительного интенсивного инбридинга формируются ROH островки, в которых одни и те же ROH последовательности встречаются у многих животных. Анализ генов, расположенных в ROH островках, может свидетельствовать о функциональном направлении селекции породы кур.
Цель работы – изучить функции генов в ROH островках у кур породы Чешская Золотистая.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
В исследовании использовали 16 куриц породы Чешская Золотистая (ЧЗ), случайно отобранных из популяции, находящейся в генетической коллекции редких и исчезающих пород (ВНИИ генетики сельскохозяйственных животных, Санкт-Петербург). Порода ЧЗ была завезена в Россию из Чехии в 1977 году. Легкая, активная и подвижная птица с оперением цвета куропатки и грифельными ногами, относится к яичному типу. Яйценоскость за 52…56 недель жизни – 150…170 яиц. Масса яйца после 52 недели – 55…56 г. Живая масса курицы – 1,4…1,6 кг, петуха – 2,0…2,3 кг.
Куры были генотипированы чипом Illumina Chicken 60KSNP iSelect Bead Chip. Работали только с аутосомами. Контроль качества генотипирования осуществляли с помощью программного обеспечения PLINK 1.9. [15] На первом этапе были удалены SNPs с показателем качества (QS) менее 0,7, затем в SNPs данных оставили не более 5% негенотипированных SNPs, также удалили SNPs с минорной частотой аллелей (MAF) < 0,01. В результате проведения контроля качества было получено 53780 SNPs.
ROH сканирование генома кур осуществлено программой detectRUNS со следующими параметрами: последовательные прогоны по аутосомам выполняли с 20 SNP; минимальный размер ROH сегментов – 250 т.п.н.; максимальное расстояние между ROH сегментами – 1 Мб. [1] Программа позволяет выявлять ROH островки. При их обнаружении гетерозиготные SNP в ROH сегментах были запрещены. В ROH островках идентичные ROH сегменты встречались у 90% кур.
Ранг хромосом вычисляли по формуле:
По данным ROH рассчитывали коэффициент инбридинга:
где LROH – суммарная длина сегментов ROH в геноме каждой курицы; Lгеном – совокупная длина аутосом курицы покрытых SNPs.
Гены, расположенные в ROH островках, были идентифицированы из браузера Ensembl BioMart. [4] Данные транскрипционной активности – TPM в тканях курицы получали в программе GalBase. [7] Транскрипты на миллион (TPM) – метод нормализации РНК последовательностей, свидетельствующий об интенсивности транскрипции гена. Функции генов определяли из статей в PubMed (https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/) и Google Академия (https://scholar.google.com/).
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
По данным ROH сканирования генома кур было выявлено среднее количество 143 ± 8ROH сегментов на курицу при условии запрета в них гетерозиготных SNP (табл. 1). Если допускался один гетерозиготный SNP, то среднее количество ROH сегментов увеличивалось до 181 ± 8, если два, то –232 ± 8. Допущение даже одного гетерозиготного SNP в ROH сегментах приводит к достоверному увеличению среднего количества ROH. Такой результат может привести к переоценке данных, так как в случае допущения гетерозиготных SNPs объединяются короткие (250…500 т.п.н.) гомозиготные ROH сегменты, которые не всегда аутозиготные. Среднее значение количества ROH сегментов (143 ± 8) для кур породы Чешская Золотистая значительно превышает этот показатель у других пород сохраняемых в коллекции ВНИИГРЖ – Амрокс (18,9 ± 1,5), Брама палевая (36,6 ± 2,1), Корниш белый (40,4 ± 1,1), Леггорн светло-коричневый (47,5 ± 2,3), Пушкинская (68,3 ± 2,0), Суссекс светлый (23,1 ± 1,5). [5] Увеличенное количество ROH сегментов, обнаруженное у кур породы Чешская Золотистая, приводит к большому коэффициенту инбридинга.
Таблица 1. Количество ROH сегментов в зависимости от числа разрешенных гетерозиготных SNP в ROH
Значение ROH* | Гетерозиготные SNP запрещены | Разрешен один гетерозиготный SNP | Разрешено два гетерозиготных SNP |
Среднее | 143 ± 8 | 181 ± 8 | 232 ± 8 |
Максимальное | 202 | 246 | 289 |
Минимальное | 88 | 118 | 170 |
Примечание. * – число кур 16.
В таблице 2 представлены данные о количестве ROH сегментов, находящихся в разных классах длин. При допущении даже одного гетерозиготного SNP в ROH сегментах значительно увеличивается количество ROH сегментов в самом коротком классе длин– 0,25…2,0 м.п.н. Таким образом, такое допущение может привести к появлению в данных не аутозиготных ROH сегментов, то есть не обусловленных селекцией ROH.
Таблица 2. Количество ROH сегментов в пяти классах длин у 16 кур породы ЧЗ
Класс длин (м.п.н.) | Гетерозиготный SNP в ROH сегментах запрещен | Разрешен один гетерозиготный SNP в ROH сегментах |
0,25...2,0 | 1667 | 2264 |
2...4 | 357 | 357 |
4...8 | 178 | 178 |
8...16 | 67 | 76 |
>16 | 24 | 27 |
На рисунке представлено распределение кур в зависимости от соотношения суммарной длины ROH сегментов к их количеству. Наблюдается различие (более чем в два раза) как по суммарной длине, так и количеству ROH сегментов в хромосомах. По этим показателям паттерна ROH сегментов только шесть кур (центральная область рисунка) имеют близкие значения.
Распределение кур по соотношению суммарной длины и количеству ROH сегментов
Ранг хромосомы, вычисленный как отношение доли ROH сегментов в хромосоме к доле длины хромосомы в геноме, представлен в таблице 3. Он свидетельствует о плотности заполнения хромосомы ROH сегментами. В основном микрохромосомы (с номером < 10) более других заполнены ROH сегментами. Частота рекомбинации в микрохромосомах в 2,8 раза больше, чем в макрохромосомах. [12] В хромосоме 16 с наименьшей плотностью заполнения ROH сегментами расположены гены ответственные за иммунитет, включая комплекс гистосовместимости. [13] Аллели этих генов имеют тенденцию к гетерозиготности. Возможно, это объясняет наименьшее число ROH сегментов в хромосоме.
Таблица 3. Ранг хромосом у кур породы ЧЗ
Хромосома | 25 | 23 | 22 | 27 | 26 | 17 | 20 | 28 | 11 | 19 |
Ранг | 0,874 | 0,853 | 0,823 | 0,739 | 0,667 | 0,643 | 0,625 | 0,601 | 0,590 | 0,511 |
Хромосома | 24 | 18 | 21 | 12 | 10 | 15 | 7 | 6 | 9 | 14 |
Ранг | 0,504 | 0,460 | 0,425 | 0,414 | 0,406 | 0,397 | 0,385 | 0,369 | 0,350 | 0,349 |
Хромосома | 8 | 13 | 1 | 2 | 4 | 3 | 5 | 16 | ||
Ранг | 0,341 | 0,317 | 0,292 | 0,266 | 0,265 | 0,260 | 0,260 | 0,110 |
Коэффициент корреляции между долей количества ROH сегментов в хромосоме от их общего числа в 28 хромосомах и долей длины хромосомы от их суммарной длины характеризует тип заполнения хромосом ROH сегментами. Рассчитанная корреляция по Пирсону составляет 0,99 (Р = 8,8Е-23), Спирмену – 0,94 (Р = 2,0Е-7). Такие высокие значения коэффициента корреляции свидетельствуют об общей тенденции к случайному распределению ROH сегментов в 28 хромосомах кур. Хромосома 16 – исключение из общей закономерности.
Средний коэффициент инбридинга у кур породы ЧЗ равен 0,34 ± 0,03. Такой результат может быть следствием малочисленности ЧЗ популяции кур, сохраняемой в генетической коллекции редких и исчезающих пород ВНИИГРЖ. Для сравнения средний коэффициент инбридинга у других пород из коллекции ВНИИГРЖ: Амрокс – 0,105 ± 0,009, Брама палевая – 0,167 ± 0,015, Корниш белый – 0,055 ± 0,007, Леггорн светло-коричневый – 0,167 ± 0,011, Пушкинская – 0,112 ± 0,009, Русская белая – 0,307 ± 0,014, Суссекс светлый – 0,127 ± 0,003. [5]
В хромосомах GGA2, GGA3, GGA9 и GGA22 были найдены четыре ROH островка. Их длина (93…403 т.п.н.) характерна для многих пород кур. [19, 21]
В хромосоме GGA2 в районе 143452130 ... 143696199 п.н. расположен ROH островок, включающий ген альфа последовательность коллагена типа XXII (COL22A1). Наибольшая транскрипционная активность этого гена обнаружена в проксимальной передней конечности, TPM = 36, коже – 32 и сетчатке глаз, TPM = 37. [7] Он был ассоциирован с целостностью тканей и клеточной адгезией. Считают, что у людей мутации в гене COL22A1 могут приводить к фиброзу легких и кожи. [22]
В хромосоме GGA3 (район 61542241 ... 61634781 п.н.) есть ROH островок, включающий ген TBC1 домен член семейства 32 (TBC1D32). Наибольшая транскрипционная активность обнаружена в мозге, ТРМ = 24, семенниках – 27, сетчатке глаз – 37, эмбрионе – 37 и голени, ТРМ = 37. [6] У ресурсных кур в F2 поколении ген TBC1D32 был ассоциирован с весом сумки Фабрициуса. [18]
Еще один ген ENS1 (другое название ядерный сигнал 1 для эндоплазматического ретикулума (ERNI)) тоже находится в этом ROH островке. Установлено, что он экспрессирует в эмбриональных яичниках и семенниках кур, а также в эмбриональных стволовых клетках. По мере дифференцировки стволовых клеток экспрессия гена ENS1 уменьшается. [9]
В хромосоме GGA9 (17727833…17952104 п.н.) расположен ROH островок с геном Х-сцепленный рецептор 1 трансдукции бета 1 (TBL1XR1). Наибольшая транскрипционная активность гена обнаружена в сумке Фабрициуса, ТРМ = 118 и голени, ТРМ = 77. [7] У кур породы Ghana он был ассоциирован с иммунным ответом на заражение вирусом болезни Ньюкасла. [20] У человека ген TBL1XR1 связан с множественными нарушениями развития и несколькими неврологическими проявлениями. [11]
В хромосоме GGA22 (454878…516797 п.н.) найден ROH островок, включающий несколько генов. Один из них переносчик растворенного вещества семейства 23, члена 2 (SLC23A2) – трансмембранный транспортер. Он максимально транскрибируется в мозге, ТРМ = 146, сетчатке глаз – 106 и голени, ТРМ = 122. [7] Известно, что ген SLC23A2 влияет на пигментацию пера у китайских пород кур. [8]
Другой ген Ras ассоциированный домен, член семейства 2 (RASSF2) максимально транскрибируется в коже, ТРМ = 177, селезенке – 195 и сумке Фабрициуса, ТРМ = 184. Этот ген у человека – супрессор рака легкого, у мышей – регулирует дифференцировку остеобластов и остеокластов, ингибируя передачу сигналов NF-κB. [3, 17]
Еще один ген прионный белок (PRNP) расположен в этом ROH островке. Его максимальная транскрипционная активность наблюдается в мозжечке, ТРМ = 752. Прионные заболевания были зарегистрированы у нескольких млекопитающих-хозяев, но у кур обнаружена устойчивость к экспериментальной прионной инфекции. Установлено, что у перепела ген PRNP регулирует деградацию нейронов. [10]
Неклассические гены теплового шока служат для защиты клеток от вредных стрессов. Ген проминин 2 (PROM2) участвует в регуляции таких генов у мышей и кур. [6] Его максимальная транскрипционная активность наблюдается в фолликулах, ТРМ = 293. Еще один ген в этом ROH островке – дигидропиримидиназа 2 (DPYSL2), участвует в формировании ожирения у кур. [2] Его максимальная транскрипция в мозге, ТРМ = 1250.
ROH островки можно рассматривать как индикаторы обусловленного селекцией инбридинга. У кур породы ЧЗ находятся гены ответственные за иммунитет (TBL1XR1), вес сумки Фабрициуса (TBC1D32), ожирение (DPYSL2), пигментацию пера (SLC23A2), регуляцию «хит шоковых» генов (PROM2) и деградацию нейронов (PRNP). Таким образом, перечисленные выше признаки были затронуты селекцией у кур породы ЧЗ. Исходя из данных в опубликованных статьях, ROH островки у кур других пород не совпадают по локализации с найденными в нашем исследовании, что свидетельствует об их уникальности для Чешской Золотистой породы кур.
Выводы. В геноме кур породы ЧЗ выявлены ROH сегменты. Среднее количество ROH на курицу – 143 ± 8. Установлена тенденция случайного распределения ROH сегментов в хромосомах кур. Коэффициент инбридинга, вычисленный исходя из ROH данных, оказался высоким (0,34 ± 0,03), по сравнению с другими породами, сохраняемыми в коллекции ВНИИГРЖ. В хромосомах кур GGA2, GGA3, GGA9 и GGA22 обнаружены ROH островки. Гены, локализованные в них, участвуют в иммунитете, деградации нейронов, степени ожирения птицы и пигментации пера.
Об авторах
Михаил Григорьевич Смарагдов
Всероссийский научно-исследовательский институт генетики и разведения сельскохозяйственных животных – филиал федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный Научный Центр Животноводства-ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста» (ВНИИГРЖ)
Автор, ответственный за переписку.
Email: spbvniigen@mail.ru
кандидат биологических наук
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Biscarini F., Cozy P., Gaspa G., Maras G. detectRUNS: An R package to detect runs of homozygosity and heterozygosity in diploid genomes. CRAN (The Compr. R Arch. Network, 2019).
- Byerly M.S., Simon J., Cogburn L.A. et al. Transcriptional profiling of hypothalamus during development of adiposity in genetically selected fat and lean chickens // Physiol. Genomics. 2010. Vol. 42 (2). P. 157–167. https://doi: 10.1152/physiolgenomics.00029.2010
- Cooper W.N., Dickinson R.E., Dallol A. et al. Epigenetic regulation of the ras effector/tumour suppressor RASSF2 in breast and lung cancer // Oncogene. 2008. Vol. 27 (12). P. 1805–1811. https://doi: 10.1038/sj.onc.1210805
- Cunningham F., Allen J.E., Allen J. et al. Ensembl // Nucleic Acids Res.2022. Vol. 50 (1). Article D988-D995. 10.1093/nar/gkab1049' target='_blank'>https://doi: 10.1093/nar/gkab1049
- Dementieva N.V., Kudinov A.A., Larkina T.A. et al. Genetic Variability in Local and Imported Germplasm Chicken Populations as Revealed by Analyzing Runs of Homozygosity // Animals. 2020. Vol. 10 (10). Article 1887. https://doi.org/10.3390/ani10101887
- Fujimoto M., Nakai A. The heat shock factor family and adaptation to proteotoxic stress // FEBS J. 2010. Vol. 277. P. 4112–4125. 10.1111/j.1742-4658.2010.07827.x' target='_blank'>https://doi: 10.1111/j.1742-4658.2010.07827.x
- Fu W., Wang R., Xu N. Galbase: a comprehensive repository for integrating chicken multi-omics data // BMC Genomics. 2022. Vol. 23 (1). Article 364. https://doi: 10.1186/s12864-022-08598-2
- Huang X., Otecko N.O., Peng M. et al. Genome-wide genetic structure and selection signatures for color in 10 traditional Chinese yellow-feathered chicken breeds // BMC Genomics. 2020. Vol. 21. Article 316. https://doi.org/10.1186/s12864-020-6736-4
- Intarapat S., Stern C.D. Sexually dimorphic and sex-independent left-right asymmetries in chicken embryonic gonads // PloS ONE. 2013. Vol. 8. Article e69893. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0069893
- Kim Y., Kim Y.C., Jeong B.H. et al. Novel Single Nucleotide Polymorphisms (SNPs) and Genetic Features of the Prion Protein Gene (PRNP) in Quail (Coturnix japonica) // Front. Vet. Sci. 2022. Vol. 9. Article 870735. https://doi: 10.3389/fvets.2022.870735
- Mastrototaro G., Zaghi M., Massimino L. et al. TBL1XR1 Ensures Balanced Neural Development Through NCOR Complex-Mediated Regulation of the MAPK Pathway // Front. Cell Dev. Biol. 2021. Vol. 9. Article 641410. https://doi: 10.3389/fcell.2021.641410
- Megens H.J., Crooijmans R.P., Bastiaansen J.W. et al. Comparison of linkage disequilibrium and haplotype diversity on macro- and microchromosomes in chicken // BMC Genetics. 2009. Vol. 10. Article 86. https://doi.org/10.1186/1471-2156-10-86
- Miller M.M., Taylor R.L. Brief review of the chicken Major Histocompatibility Complex: the genes, their distribution on chromosome 16, and their contributions to disease esistance // Poultry Sci. 2016. Vol. 95 (2). P. 375–392. https://doi.org/10.3382/ps/pev379
- Peripolli E., Munari D., Silva M. et al. Runs of homozygosity: current knowledge and applications in livestock // Anim. Genet. 2016. Vol. 48 (3). P. 255–271. https://doi 10.1111/age.12526
- Purcell S., Neale B., Todd-Brown K. et al. PLINK: A tool set for whole-genome association and population-based linkage analyses // Am. J. Hum. Genet. 2007. Vol. 81. P. 559–575. https://doi: 10.1086/519795
- Smaragdov M.G. Identification of homozygosity-rich regions in the Holstein genome // Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2023. Vol. 27 (5). P. 471–479. https://doi.10.18699/VJGB-23-57
- Song H., Kim H., Lee K. et al. Ablation of Rassf2 induces bone defects and subsequent haematopoietic anomalies in mice // EMBO J. 2012. Vol. 31 (5). P. 1147–1159. https://doi.org/10.1038/emboj.2011.480
- Sun Y., Li Q., Hu Y. Genomewide association study of immune traits in chicken F2 resource population // J. Anim. Breed. Genet. 2016. Vol. 133 (3). P. 197–206. https://doi.org/10.1111/jbg.12186
- Tian S., Tang W., Zhong Z. Identification of Runs of Homozygosity Islands and Functional Variants in Wenchang Chicken // Animals 2023. Vol. 13 (10). Article 1645. https://doi.org/10.3390/ani13101645
- Walugembe M., Amuzu-Aweh E.N., Botchway P.K. et al. Genetic Basis of Response of Ghanaian Local Chickens to Infection with a Lentogenic Newcastle Disease Virus // Front. Genet. 2020. Vol. 11. Article 739. https://doi.org/10.3389/fgene.2020.00739
- Wang H., Wang Q., Tan X. et al. Estimation of genetic variability and identification of regions under selection based on runs of homozygosity in Beijing-You Chickens // Poultry Sci. 2023. Vol. 102 (2). Article 102342. https://doi.org/10.1016/j.psj.2022.102342
- Watanabe T., Baker Frost D.A., Mlakar L. A Human Skin Model Recapitulates Systemic Sclerosis Dermal Fibrosis and Identifies COL22A1 as a TGF_ Early Response Gene that Mediates Fibroblast to Myofibroblast Transition // Genes 2019. Vol. 10. Article 75. 10.3390/genes10020075' target='_blank'>https://doi: 10.3390/genes10020075
Дополнительные файлы
