ВЛИЯНИЕ ХЛОРГЕКСИДИНА И «ПРОНТОСАНА» НА БИОПЛЕНКУ, СФОРМИРОВАННУЮ STAPHYLOCOCCUS AUREUS (исследование in vitro )

  • Авторы: Еньчева Ю.А.1, Кузнецова М.В.2, Рубцова Е.В.3, Афанасьевская Е.В.4, Самарцев В.А.4
  • Учреждения:
    1. Городская клиническая больница № 21, г. Пермь, Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е. А. Вагнера
    2. Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е. А. Вагнера, Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения Российской академии наук, г. Пермь, Российская Федерация
    3. Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения Российской академии наук, г. Пермь, Российская Федерация
    4. Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е. А. Вагнера
  • Выпуск: Том 32, № 1 (2015)
  • Страницы: 84-91
  • Раздел: Статьи
  • URL: https://permmedjournal.ru/PMJ/article/view/3227
  • DOI: https://doi.org/10.17816/pmj32184-91
  • ID: 3227

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель. Изучить морфометрические показатели моновидовой биопленки, образованной S. aureus , после воздействия хлоргексидина и «Пронтосана ®». Материалы и методы. Объектами изучения служили референтный штамм S. aureus АТСС ®29213 и клинические изоляты S. aureus ( n = 39). Биопленкообразование изучали согласно G. F. O’Toole и R. Kolter (1998). Результаты. Антисептики хлоргексидин и «Пронтосан ®» вызывали изменение структуры стафилококковой биопленки, что характеризовалось появлением участков разряжения и увеличением показателя шероховатости поверхности, а также повреждения клеток, которые проявлялись в уменьшении диаметра и снижении количества жизнеспособных бактерий. Экспозиция с антисептиками приводила к снижению величины/массивности биопленки, образованной как на гидрофильной, так и гидрофобной поверхности. Показатель Ме (Q1-Q3), характеризующий величину биопленки на гидрофобной поверхности, после воздействия «Пронтосана ®» составил 0,154 (0,095-0,287), а хлоргексидина - 0,165 (0,118-0,268) ед. ОП 580. Достоверность отличий в группах показана только для пары контрольные образцы/«Пронтосан ®» ( р = 0,000128). Выводы. Использованные препараты, в большей степени «Пронтосан ®», показали высокую активность в «хирургических» концентрациях в отношении бактериальных биопленок, образованных S. aureus , вызывая изменение их структуры. Экспозиция с антисептиками приводила к снижению величины/массивности биопленки, образованной как на гидрофильной, так и гидрофобной поверхности. Оба исследованных препарата высокоактивны в отношении стафилококковых биопленок (с небольшим преимуществом «Пронтосана ®»).

Об авторах

Юлия Абыталиновна Еньчева

Городская клиническая больница № 21, г. Пермь, Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е. А. Вагнера

Email: yencheva@mail.ru
врач-хирург ожогового отделения, аспирант кафедры общей хирургии №1

Марина Валентиновна Кузнецова

Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е. А. Вагнера, Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения Российской академии наук, г. Пермь, Российская Федерация

доцент кафедры микробиологии и вирусологии с курсом КДЛ, к.б.н., научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии и биотехнологии

Екатерина Владиславовна Рубцова

Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения Российской академии наук, г. Пермь, Российская Федерация

к.б.н., научный сотрудник лаборатории алканотрофных микроорганизмов

Елизавета Викторовна Афанасьевская

Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е. А. Вагнера

к.м.н., доцент кафедры микробиологии, вирусологии с курсом КЛД

Владимир Аркадьевич Самарцев

Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е. А. Вагнера

д.м.н., профессор, заведующий кафедрой общей хирургии №1

Список литературы

  1. Алексеев А. А., Бобровников А. Э., Крутиков М. Г. Опыт применения полигексанида для местного лечения инфицированных ожоговых ран. Consilium medicum. Хирургия 2006; 1: 55-58.
  2. Бережанский Б. В., Жевнерев А. А. Катетер-ассоциированные инфекции кровотока. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия 2006; 8 (2): 130-144.
  3. Гординская Н. А., Сабирова Е. В., Абрамова Н. В. Фенотипические и молекулярно-генетические особенности возбудителей раневой ожоговой инфекции. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия 2012; (4): 342-346.
  4. Зверьков А. В., Зузова А. П. Хлоргексидин: прошлое, настоящее и будущее одного из основных антисептиков. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия 2013; 15 (4): 279-285.
  5. Крылов К. М., Крылов П. К. Современные возможности местного лечения ожогов. Амбулаторная хирургия 2010; 1 (37): 30-35.
  6. Харитонов Ю. М., Фролов И. С. Новые технологии в лечении больных одонтогенной гнойной инфекцией. Фундаментальные исследования 2014; 7: 582-584.
  7. Чеботарь И. В., Маянский Н. А., Кончакова Е. Д. Новый метод исследования антибиотикорезистентности бактериальных биопленок. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия 2012; 14 (4): 303-308.
  8. Чмырёв И. В., Скворцов Ю. Р., Кичемасов С. Х. Использование «Пронтосана» после поздней некрэктомии при глубоких ожогах. Вестник Национального медико-хирургического центра им. Н. И. Пирогова 2010; 5 (2): 49-54.
  9. Шайхутдинова А. Р. Механизмы модуляции работы рецепторно-канального комплекса хлоргексидином. Доклады академии наук 2005; 402: 427-429.
  10. Agarwal A., Singh K. P., Jain A. Medical significance and management of staphylococcal biofilm. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 2010; 58: 147-160.
  11. Belkum A. Staphylococcal colonization and infection: homeostasis versus disbalance of human (innate) immunity and bacterial virulence. Curr. Opin. Infect. Dis. 2006; 19: 339-344.
  12. Clarke S. R., Foster S. J. Surface adhesins of Staphylococcus aureus. Adv. Microb. Physiol. 2006; 51: 187-224.
  13. Hübner N. O., Kramer A. Review on the efficacy, safety and clinical applications of polihexanide, a modern wound antiseptic. Skin Pharmacol. Physiol. 2010; 23: 17-27.
  14. Lewis K. Multidrug tolerance of biofilms and persister cells. Curr. Microbial. Immunol. 2008; 322: 107-131.
  15. O'Toole G. F., Kolter R. Flagellar and twitching motility are necessary for Pseudomonas aeruginosa biofilm development. Mol. Microbiol. 1998; 30: 295-304.
  16. Otto M. Staphylococcal biofilms. Curr. Top Microbiol. Immunol. 2008; 322: 207-228.
  17. Singh R., Ray P., Das A., Sharma M. Penetration of antibiotics through Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis biofilms. J. Antimicrob. Chemother. 2010; 65: 1955-1958.
  18. Smith K., Hunter I. S. Efficacy of common hospital biocides with biofilms of multi-drug resistant clinical isolates. J. Med. Microbiol. 2008; 57 (8): 966-793.
  19. Taj Y., Essa F., Aziz F., Kazmi S. U. Study on biofilm-forming properties of clinical isolates of Staphylococcus aureus. J. Infect. Dev. Ctries. 2012; 6 (5): 403-409.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Еньчева Ю.А., Кузнецова М.В., Рубцова Е.В., Афанасьевская Е.В., Самарцев В.А., 2015

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-ShareAlike 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 70264 от 13.07.2017 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 75489 от 05.04.2019 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах