CHLORHEXIDINE AND «PRONTOSAN» EFFECT ON BIOFILM FORMED BY STAPHYLOCOCCUS AUREUS ( in vitro study)


Cite item

Full Text

Abstract

Aim. To study the morphological indices of the monospecific biofilm formed by S. aureus after chlorhexidine and “Prontosan®” exposure. Materials and methods. The study objects included referent strain S. aureus ATCC®29213 and clinical isolates S. aureus ( n = 39). Biofilm formation was investigated by O’Toole G.F. and Kolter R. (1998). Results. Anticeptics chlorhexidine and “Prontosan®” caused changes in the structure of staphylococcal biofilm that was characterized by appearance of the areas of discharge and rise in surface roughness index as well as damages of cells which were manifested by decrease in diameter and number of viable bacteria. Anticeptic exposure led to decline in size/massiveness of biofilm formed both on hydrophilic and hydrophobic surface. [Me (Q1-Q3)] index characterizing the size of biofilm on the hydrophobic surface was 0,154 (0,095-0,287) after “Prontosan®” exposure, but after chlorhexidine exposure it was 0,165 (0,118-0,268) un. OP 580. Reliability of differences in the groups was indicated only for control/“Prontosan®” pair ( p = 0,000128). Conclusions. The used drugs, mostly “Prontosan®”, showed a high activity in “surgical” concentrations in relation to bacterial biofilms formed by S. aureus causing changes in its structure. Anticeptic exposure led to decrease in size/massiveness of biofilm formed both on hydrophilic and hydrophobic surfaces. Both drugs are high active in relation to staphylococcal biofilm with a slight benefit of “Prontosan®”.

References

  1. Алексеев А. А., Бобровников А. Э., Крутиков М. Г. Опыт применения полигексанида для местного лечения инфицированных ожоговых ран. Consilium medicum. Хирургия 2006; 1: 55-58.
  2. Бережанский Б. В., Жевнерев А. А. Катетер-ассоциированные инфекции кровотока. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия 2006; 8 (2): 130-144.
  3. Гординская Н. А., Сабирова Е. В., Абрамова Н. В. Фенотипические и молекулярно-генетические особенности возбудителей раневой ожоговой инфекции. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия 2012; (4): 342-346.
  4. Зверьков А. В., Зузова А. П. Хлоргексидин: прошлое, настоящее и будущее одного из основных антисептиков. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия 2013; 15 (4): 279-285.
  5. Крылов К. М., Крылов П. К. Современные возможности местного лечения ожогов. Амбулаторная хирургия 2010; 1 (37): 30-35.
  6. Харитонов Ю. М., Фролов И. С. Новые технологии в лечении больных одонтогенной гнойной инфекцией. Фундаментальные исследования 2014; 7: 582-584.
  7. Чеботарь И. В., Маянский Н. А., Кончакова Е. Д. Новый метод исследования антибиотикорезистентности бактериальных биопленок. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия 2012; 14 (4): 303-308.
  8. Чмырёв И. В., Скворцов Ю. Р., Кичемасов С. Х. Использование «Пронтосана» после поздней некрэктомии при глубоких ожогах. Вестник Национального медико-хирургического центра им. Н. И. Пирогова 2010; 5 (2): 49-54.
  9. Шайхутдинова А. Р. Механизмы модуляции работы рецепторно-канального комплекса хлоргексидином. Доклады академии наук 2005; 402: 427-429.
  10. Agarwal A., Singh K. P., Jain A. Medical significance and management of staphylococcal biofilm. FEMS Immunol. Med. Microbiol. 2010; 58: 147-160.
  11. Belkum A. Staphylococcal colonization and infection: homeostasis versus disbalance of human (innate) immunity and bacterial virulence. Curr. Opin. Infect. Dis. 2006; 19: 339-344.
  12. Clarke S. R., Foster S. J. Surface adhesins of Staphylococcus aureus. Adv. Microb. Physiol. 2006; 51: 187-224.
  13. Hübner N. O., Kramer A. Review on the efficacy, safety and clinical applications of polihexanide, a modern wound antiseptic. Skin Pharmacol. Physiol. 2010; 23: 17-27.
  14. Lewis K. Multidrug tolerance of biofilms and persister cells. Curr. Microbial. Immunol. 2008; 322: 107-131.
  15. O'Toole G. F., Kolter R. Flagellar and twitching motility are necessary for Pseudomonas aeruginosa biofilm development. Mol. Microbiol. 1998; 30: 295-304.
  16. Otto M. Staphylococcal biofilms. Curr. Top Microbiol. Immunol. 2008; 322: 207-228.
  17. Singh R., Ray P., Das A., Sharma M. Penetration of antibiotics through Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis biofilms. J. Antimicrob. Chemother. 2010; 65: 1955-1958.
  18. Smith K., Hunter I. S. Efficacy of common hospital biocides with biofilms of multi-drug resistant clinical isolates. J. Med. Microbiol. 2008; 57 (8): 966-793.
  19. Taj Y., Essa F., Aziz F., Kazmi S. U. Study on biofilm-forming properties of clinical isolates of Staphylococcus aureus. J. Infect. Dev. Ctries. 2012; 6 (5): 403-409.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2015 Encheva Y.A., Kuznetsova M.V., Rubtsova E.A., Afanasievskaya E.V., Samartsev V.A.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-ShareAlike 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 70264 от 13.07.2017 г. 
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ЭЛ № ФС 77 - 75489 от 05.04.2019 г.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies